| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 缩略语/符号说明 | 第13-15页 |
| 前言 | 第15-17页 |
| 研究现状、成果 | 第15-16页 |
| 研究目的、方法 | 第16-17页 |
| 一、不同剂量Dex对脓毒症大鼠肝脏功能的具体作用 | 第17-30页 |
| 1.1 对象和方法 | 第17-22页 |
| 1.1.1 实验材料 | 第17页 |
| 1.1.1.1 实验动物 | 第17页 |
| 1.1.1.2 主要实验仪器及试剂 | 第17页 |
| 1.1.2 实验方法 | 第17-22页 |
| 1.1.2.1 尾静脉置管 | 第18页 |
| 1.1.2.2 分组及CLP模型制备 | 第18-19页 |
| 1.1.2.3 24h生存率观测 | 第19页 |
| 1.1.2.4 ABG及血清ALT和AST检测 | 第19页 |
| 1.1.2.5 肝脏组织标本的采集 | 第19页 |
| 1.1.2.6 HE观察肝脏形态学变化 | 第19-20页 |
| 1.1.2.7 ELISA检测肝脏组织的IL-6和TNFα水平 | 第20-21页 |
| 1.1.2.8 TUNEL检测肝脏组织的细胞死亡情况 | 第21-22页 |
| 1.1.2.9 统计学分析 | 第22页 |
| 1.2 结果 | 第22-27页 |
| 1.2.1 Dex预处理对大鼠 24h生存率的影响 | 第22-23页 |
| 1.2.2 Dex预处理对大鼠肝脏功能及形态学的影响 | 第23-24页 |
| 1.2.3 Dex预处理对大鼠肝脏炎症因子水平的影响 | 第24-25页 |
| 1.2.4 Dex预处理对大鼠ABG的影响 | 第25-26页 |
| 1.2.5 Dex预处理对大鼠肝脏细胞死亡情况的影响 | 第26-27页 |
| 1.3 讨论 | 第27-29页 |
| 1.3.1 动物模型的建立 | 第27-28页 |
| 1.3.2 肝酶及炎症因子结果讨论 | 第28页 |
| 1.3.3 ABG结果讨论 | 第28-29页 |
| 1.3.4 细胞死亡情况结果讨论 | 第29页 |
| 1.4 小结 | 第29-30页 |
| 二、脓毒症时肝细胞的死亡类型 | 第30-39页 |
| 2.1 对象和方法 | 第30-35页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第30页 |
| 2.1.1.1 实验动物 | 第30页 |
| 2.1.1.2 主要实验仪器及试剂 | 第30页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第30-35页 |
| 2.1.2.1 尾静脉置管 | 第30页 |
| 2.1.2.2 分组及CLP模型制备 | 第30-31页 |
| 2.1.2.3 大鼠肝脏标本的采集 | 第31页 |
| 2.1.2.4 化学荧光法检测肝脏组织ROS水平 | 第31页 |
| 2.1.2.5 western blot检测肝脏组织RIP1、RIP3和MLKL表达水平变化 | 第31-34页 |
| 2.1.2.6 统计学分析 | 第34-35页 |
| 2.2 结果 | 第35-36页 |
| 2.2.1 Nec-1输注可引起脓毒症大鼠肝脏组织ROS水平发生变化 | 第35页 |
| 2.2.2 Nec-1输注可引起脓毒症大鼠肝脏组织RIP1、RIP3及MLKL的表达发生改变 | 第35-36页 |
| 2.3 讨论 | 第36-38页 |
| 2.3.1 动物模型的建立 | 第36页 |
| 2.3.2 RIP1、RIP3及MLKL结果讨论 | 第36-37页 |
| 2.3.3 ROS结果讨论 | 第37-38页 |
| 2.4 小结 | 第38-39页 |
| 三、右美托嘧啶可抑制necroptosis从而发挥肝脏保护作用 | 第39-48页 |
| 3.1 对象和方法 | 第39-42页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第39页 |
| 3.1.1.1 实验动物 | 第39页 |
| 3.1.1.2 主要实验仪器及试剂 | 第39页 |
| 3.1.2 实验方法 | 第39-42页 |
| 3.1.2.1 尾静脉置管 | 第39页 |
| 3.1.2.2 分组及CLP模型制备 | 第39-40页 |
| 3.1.2.3 大鼠肝脏标本的采集 | 第40页 |
| 3.1.2.4 化学荧光法检测肝脏组织ROS水平 | 第40页 |
| 3.1.2.5 western blot检测肝脏组织蛋白表达水平变化 | 第40-42页 |
| 3.1.2.6 统计学分析 | 第42页 |
| 3.2 结果 | 第42-45页 |
| 3.2.1 Dex预处理对大鼠肝脏组织ROS水平的影响 | 第42-43页 |
| 3.2.2 Dex预处理对大鼠肝脏组织蛋白表达水平的影响 | 第43-44页 |
| 3.2.3 不同剂量Nec-1对大鼠肝脏蛋白表达水平的影响 | 第44页 |
| 3.2.4 Dex联合Nec-1对大鼠肝脏蛋白表达情况的影响 | 第44-45页 |
| 3.3 讨论 | 第45-47页 |
| 3.3.1 动物模型的建立 | 第45页 |
| 3.3.2 Dex预处理对大鼠肝脏ROS水平的结果讨论 | 第45-46页 |
| 3.3.3 Dex预处理对大鼠肝脏蛋白表达水平的结果讨论 | 第46页 |
| 3.3.4 不同剂量Nec-1的应用对大鼠肝脏蛋白表达水平的结果讨论 | 第46-47页 |
| 3.3.5 Dex联合Nec-1对大鼠肝脏蛋白表达情况的结果讨论 | 第47页 |
| 3.4 小结 | 第47-48页 |
| 结论 | 第48-50页 |
| 论文创新点 | 第48页 |
| 不足之处 | 第48-50页 |
| 参考文献 | 第50-54页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第54-55页 |
| 综述 程序性坏死在炎症中具体作用的相关研究 | 第55-63页 |
| 参考文献 | 第59-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
| 个人简历 | 第64页 |
