| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-17页 |
| 1.1 宫颈癌研究现状 | 第10-11页 |
| 1.2 表观遗传学与肿瘤形成 | 第11-13页 |
| 1.3 组蛋白去乙酰化酶（HDAC）及其抑制剂的（HDACi）研究现状 | 第13-15页 |
| 1.4 伏立诺他（SAHA）与紫杉醇联合使用治疗肿瘤的研究现状 | 第15-16页 |
| 1.5 本实验的目的与研究意义 | 第16-17页 |
| 第二章 材料与方法 | 第17-31页 |
| 2.1 实验细胞 | 第17页 |
| 2.2 主要试剂 | 第17-18页 |
| 2.3 主要仪器 | 第18-19页 |
| 2.4 主要试剂配制 | 第19页 |
| 2.5 细胞培养 | 第19-21页 |
| 2.5.1 细胞的复苏 | 第19-20页 |
| 2.5.2 细胞的换液 | 第20页 |
| 2.5.3 细胞的传代 | 第20页 |
| 2.5.4 细胞的冻存 | 第20-21页 |
| 2.6 不同浓度SAHA对HeLa细胞增殖的抑制实验 | 第21页 |
| 2.7 不同浓度紫杉醇对HeLa细胞增殖的抑制实验 | 第21-22页 |
| 2.8 SAHA联合紫衫醇对HeLa细胞增殖的抑制试验 | 第22页 |
| 2.9 SAHA预处理后紫杉醇对HeLa细胞IC50的测定 | 第22-23页 |
| 2.10 SAHA与紫杉醇联合用药对HeLa细胞凋亡的影响 | 第23-24页 |
| 2.11 SAHA与紫杉醇联合用药对HeLa细胞周期的影响 | 第24页 |
| 2.12 SAHA与紫杉醇联合用药对HeLa细胞活性氧（ROS）的影响 | 第24页 |
| 2.13 免疫荧光观察不同实验处理后HeLa细胞内部形态 | 第24-25页 |
| 2.14 SAHA与紫杉醇联合用药对He La细胞P27 抑癌基因m RNA的影响 | 第25-27页 |
| 2.14.1 He La细胞总RNA的提取 | 第25-26页 |
| 2.14.2 反转录c DNA | 第26页 |
| 2.14.3 RT-PCR检测抑癌基因p27 的m RNA表达 | 第26-27页 |
| 2.15 SAHA 与紫杉醇联合用药对 He La 细胞相关蛋白的表达影响 | 第27-30页 |
| 2.15.1 He La 细胞总蛋白的提取 | 第27页 |
| 2.15.2 蛋白定量 | 第27-28页 |
| 2.15.3 变性聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE) | 第28-29页 |
| 2.15.4 转膜 | 第29-30页 |
| 2.16 统计学分析 | 第30-31页 |
| 第三章 实验结果 | 第31-43页 |
| 3.1 不同浓度的SAHA对He La细胞增殖的影响 | 第31-32页 |
| 3.2 不同浓度的紫杉醇对He La细胞增殖的影响 | 第32页 |
| 3.3 SAHA和紫杉醇联合使用抑制He La细胞的增殖 | 第32-34页 |
| 3.4 SAHA预处理后可降低紫杉醇对He La细胞的IC50 | 第34页 |
| 3.5 SAHA与紫杉醇联合使用对He La细胞凋亡的影响 | 第34-36页 |
| 3.6 SAHA与紫杉醇联合使用对He La细胞周期的影响 | 第36-37页 |
| 3.7 SAHA与紫杉醇联合使用对He La细胞中活性氧(ROS)的影响 | 第37-38页 |
| 3.8 SAHA与紫杉醇联合使用对He La细胞微管结构的影响 | 第38-39页 |
| 3.9 SAHA与紫杉醇联合使用对He La细胞中抑癌基因P27 的m RNA表达量的影响 | 第39-40页 |
| 3.10 SAHA与紫杉醇联合使用对He La细胞中乙酰化组蛋白H4(Ac-H4)蛋白表达的影响 | 第40-41页 |
| 3.11 SAHA与紫杉醇联合使用对He La细胞中caspase-3 和Caspase-9蛋白表达的影响 | 第41-43页 |
| 第四章 讨论 | 第43-47页 |
| 第五章 结论 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
| 攻读硕士学位期间的研究成果 | 第56页 |
