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棘孢木霉Hsp24基因转化山新杨培育抗病转基因株系

摘要第3-4页
Abstract第4-5页
1 绪论第9-14页
    1.1 课题背景及意义第9-10页
    1.2 国内外文献综述及研究进展第10-13页
        1.2.1 植物转基因方面第10页
        1.2.2 生防木霉与病原菌互作第10-12页
        1.2.3 热激蛋白的功能第12-13页
    1.3 研究不足及待深入研究的问题第13页
    1.4 课题来源及研究内容第13-14页
        1.4.1 课题来源第13页
        1.4.2 研究内容第13-14页
2 棘孢木霉热激蛋白基因Hsp24的克隆及分析第14-26页
    2.1 实验材料第14-15页
        2.1.1 质粒及菌株第14页
        2.1.2 培养基及缓冲液第14页
        2.1.3 药品第14页
        2.1.4 实验器材第14-15页
    2.2 实验方法第15-17页
        2.2.1 棘孢木霉基因组DNA的提取第15页
        2.2.2 棘孢木霉Hsp24基因的克隆第15-17页
        2.2.3 Hsp24启动子区序列克隆第17页
        2.2.4 Hsp24基因及蛋白的生物信息学特征第17页
    2.3 实验结果第17-25页
        2.3.1 棘孢木霉基因组DNA的提取第17-18页
        2.3.2 棘孢木霉Hsp24基因的克隆第18页
        2.3.3 棘孢木霉Hsp24基因启动子区克隆及分析第18-19页
        2.3.4 棘孢木霉Hsp24基因的序列分析第19-20页
        2.3.5 热激蛋白Hsp24的生物信息特征分析第20-25页
    2.4 热激蛋白基因的克隆及生物信息分析的讨论第25页
        2.4.1 棘孢木霉Hsp24基因的克隆第25页
        2.4.2 热激蛋白及其基因的生物信息分析第25页
    2.5 本章小结第25-26页
3 棘孢木霉热激蛋白基因Hsp24的差异表达第26-36页
    3.1 实验材料第26-27页
        3.1.1 菌株第26页
        3.1.2 培养基第26页
        3.1.3 药品及工具酶第26页
        3.1.4 实验器材第26-27页
    3.2 实验方法第27-29页
        3.2.1 棘孢木霉Hsp24基因的表达差异第27-28页
        3.2.2 荧光定量PCR实验第28-29页
    3.3 实验结果第29-35页
        3.3.1 Hsp24基因在MM培养基中的表达第29-30页
        3.3.2 生物因素胁迫下Hsp24基因的表达第30-32页
        3.3.3 非生物压力胁迫下Hsp24基因的表达第32-35页
    3.4 棘孢木霉Hsp24基因表达情况的讨论第35页
        3.4.1 生物因素对Hsp24基因表达的影响第35页
        3.4.2 非生物因素对Hsp24基因表达的影响第35页
    3.5 本章小结第35-36页
4 山新杨转化子Pdpap-Hsp24s的构建第36-46页
    4.1 实验材料第36-37页
        4.1.1 植物、菌株和质粒第36页
        4.1.2 培养基第36-37页
        4.1.3 药品和酶制剂第37页
        4.1.4 实验仪器第37页
    4.2 实验方法第37-42页
        4.2.1 重组载体pROK2-Hsp24的构建第37-39页
        4.2.2 重组根癌农杆菌EHA105-Hsp24的构建第39-41页
        4.2.3 山新杨转化子Pdpap-Hsp24的获得第41-42页
    4.3 实验结果第42-45页
        4.3.1 重组载体pROK2-Hsp24的构建第42-44页
        4.3.2 山新杨转化子Pdpap-Hsp24的扩繁与检测第44-45页
    4.4 植物表达载体及杨树转化子构建的讨论第45页
    4.5 本章小结第45-46页
5 山新杨转化子Pdpap-Hsp24s的抗病性检测第46-60页
    5.1 实验材料第46页
        5.1.1 植物材料及病原真菌菌株第46页
        5.1.2 培养基第46页
        5.1.3 药品和酶制剂第46页
        5.1.4 实验器材第46页
    5.2 试验方法第46-49页
        5.2.1 四个转化子株系中病程相关蛋白的表达分析第46-47页
        5.2.2 杨树烂皮病胁迫下杨树转化子防卫信号途径相关基因的分析第47-48页
        5.2.3 杨树烂皮病胁迫下山新杨转化子细胞膜透性及活性氧含量测定第48页
        5.2.4 叶枯病菌胁迫下杨树转化子Pdpap-Hsp24抗氧化能力分析第48-49页
        5.2.5 山新杨转化子Pdpap-Hsp24的抗叶枯病能力检测第49页
    5.3 实验结果第49-57页
        5.3.1 山新杨转化子中病程相关蛋白基因PR的表达检测第49-51页
        5.3.2 杨树烂皮病的胁迫下杨树转化子防卫信号途径相关基因的表达第51-53页
        5.3.3 杨树烂皮病的胁迫下杨树转化子的细胞膜透性及活性氧含量第53-55页
        5.3.4 杨树叶枯病的胁迫下杨树转化子的抗氧化能力分析第55-56页
        5.3.5 转化子Pdpap-Hsp24的抗杨树叶枯病能力检测第56-57页
    5.4 山新杨转化子Pdpap-Hsp24抗病能力讨论第57-59页
        5.4.1 转化子Pdpap-Hsp24病程相关基因的表达第57页
        5.4.2 转化子Pdpap-Hsp24抗杨树烂皮病的能力第57-58页
        5.4.3 转化子Pdpap-Hsp24抗杨树叶枯病的能力第58-59页
    5.5 本章小结第59-60页
结论第60-61页
参考文献第61-66页
附录第66-67页
攻读学位期间发表的学术论文第67-68页
致谢第68-69页

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