摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
第1章 绪论 | 第10-22页 |
1.1 硬骨鱼类miRNA研究概况 | 第10-15页 |
1.1.1 miRNA的研究概况 | 第10页 |
1.1.2 硬骨鱼类miRNA研究概况 | 第10-11页 |
1.1.3 miRNA在硬骨鱼类早期发育中的作用 | 第11-12页 |
1.1.4 miRNA在硬骨鱼类器官形成中的作用 | 第12-13页 |
1.1.5 miRNA在硬骨鱼类生长发育中的作用 | 第13-15页 |
1.2 硬骨鱼类渗透压调控相关miRNA的研究进展 | 第15-16页 |
1.3 硬骨鱼类SOD基因的研究进展 | 第16-17页 |
1.4 花鳗鲡研究进展 | 第17-19页 |
1.4.1 花鳗鲡简介 | 第17-18页 |
1.4.2 花鳗鲡资源情况 | 第18页 |
1.4.3 花鳗鲡渗透压调控机制的研究进展 | 第18-19页 |
1.5 本研究的目的、意义和主要内容 | 第19-22页 |
1.5.1 本研究的目的和意义 | 第19-20页 |
1.5.2 本研究的主要内容 | 第20页 |
1.5.3 研究技术路线 | 第20-22页 |
第2章 不同盐度下花鳗鲡鳃组织miRNA表达谱分析 | 第22-49页 |
2.1 引言 | 第22页 |
2.2 实验仪器、材料和试剂 | 第22-23页 |
2.2.1 实验仪器 | 第22页 |
2.2.2 实验材料 | 第22-23页 |
2.2.3 实验试剂 | 第23页 |
2.3 实验方法 | 第23-31页 |
2.3.1 总RNA的提取 | 第23-24页 |
2.3.2 小RNA文库的构建 | 第24-25页 |
2.3.3 构建cDNA文库 | 第25-26页 |
2.3.4 花鳗鲡鳃组织miRNA的鉴定和特征分析 | 第26-27页 |
2.3.5 不同盐度组花鳗鲡鳃组织中miRNA表达差异谱分析及功能预测 | 第27-31页 |
2.4 测序结果 | 第31-47页 |
2.4.1 测序序列的纯化 | 第31-32页 |
2.4.2 序列长度的统计分析 | 第32页 |
2.4.3 MiRNA分类概况 | 第32页 |
2.4.4 保守miRNA的比对以及特征分析 | 第32-39页 |
2.4.5 不同盐度下花鳗鲡鳃组织miRNA的差异表达谱 | 第39-47页 |
2.5 讨论 | 第47-49页 |
第3章 花鳗鲡SOD基因的克隆和序列特征分析 | 第49-61页 |
3.1 引言 | 第49页 |
3.2 实验仪器、材料和试剂 | 第49-50页 |
3.2.1 实验仪器 | 第49页 |
3.2.2 实验材料 | 第49页 |
3.2.3 实验试剂 | 第49-50页 |
3.3 实验方法 | 第50-52页 |
3.3.1 缓冲液配制 | 第50页 |
3.3.2 构建cDNA文库 | 第50-51页 |
3.3.3 全长克隆 | 第51-52页 |
3.3.4 基因序列的生物信息学分析 | 第52页 |
3.4 结果与分析 | 第52-59页 |
3.4.1 两个AmSOD基因cDNA全长和氨基酸序列特征 | 第52-55页 |
3.4.2 两个AmSOD蛋白序列的多重比较分析 | 第55-56页 |
3.4.3 两个AmSOD蛋白3D结构分析 | 第56-57页 |
3.4.4 两个AmSOD蛋白的系统进化树分析 | 第57页 |
3.4.5 两个AmSOD基因的组织表达分析 | 第57-59页 |
3.5 讨论 | 第59-61页 |
第4章 不同盐度下花鳗鲡SOD基因的表达分析 | 第61-72页 |
4.1 实验材料与方法 | 第61-64页 |
4.1.1 实验仪器材料与试剂 | 第61页 |
4.1.2 实验动物 | 第61页 |
4.1.3 实验方法 | 第61-64页 |
4.2 结果与分析 | 第64-70页 |
4.2.1 盐度组SOD基因的表达分析 | 第64-67页 |
4.2.2 免疫应答组SOD基因的表达分析 | 第67-70页 |
4.3 讨论 | 第70-72页 |
第5章 结论 | 第72-75页 |
5.1 结论 | 第72-73页 |
5.1.1 不同盐度下花鳗鲡鳃组织miRNA的表达谱 | 第72页 |
5.1.2 花鳗鲡MnSOD和Cu/ZnSOD基因的初步分析 | 第72-73页 |
5.2 主要创新点 | 第73-74页 |
5.3 研究展望 | 第74-75页 |
附表A | 第75-86页 |
参考文献 | 第86-99页 |
在读期间发表的学术论文及研究成果 | 第99-101页 |
致谢 | 第101页 |