| 附件 | 第1-6页 |
| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7-11页 |
| 英文缩略表 | 第11-12页 |
| 第一章 引言 | 第12-23页 |
| ·叶色突变体 | 第12-17页 |
| ·叶色突变体来源及分类 | 第12-13页 |
| ·导致叶色变异的机理 | 第13-17页 |
| ·叶色突变体的应用 | 第17页 |
| ·CAO蛋白的功能 | 第17-20页 |
| ·CAO蛋白的结构特征 | 第17-18页 |
| ·CAO蛋白的生理功能 | 第18-20页 |
| ·OsCBSX3的功能 | 第20-21页 |
| ·CBS结构域 | 第20-21页 |
| ·CBSX蛋白的功能 | 第21页 |
| ·研究目的与意义 | 第21-23页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第23-36页 |
| ·实验材料 | 第23-25页 |
| ·水稻材料及种植方法 | 第23页 |
| ·试剂 | 第23页 |
| ·菌株及质粒 | 第23页 |
| ·引物 | 第23-25页 |
| ·实验方法 | 第25-36页 |
| ·培养基的配置方法 | 第25页 |
| ·植物基因组DNA提取方法 | 第25-26页 |
| ·基因的克隆 | 第26-29页 |
| ·载体的构建 | 第29页 |
| ·农杆菌感受态的制备与转化 | 第29-30页 |
| ·植物总RNA提取方法 | 第30页 |
| ·cDNA第一条链的制备 | 第30-31页 |
| ·荧光定量PCR（Q-PCR）反应体系与程序 | 第31页 |
| ·主要农艺性状的统计 | 第31页 |
| ·叶绿素含量及光合速率参数的测定 | 第31-32页 |
| ·透射电镜观察叶绿体结构 | 第32页 |
| ·F2群体构建与基因定位 | 第32-33页 |
| ·生物信息学分析 | 第33页 |
| ·组织表达特性分析 | 第33页 |
| ·水稻原生质体的制备与转化 | 第33-34页 |
| ·酵母感受态的制备与转化 | 第34-36页 |
| 第三章 实验结果与分析 | 第36-46页 |
| ·yl1突变体表型分析 | 第36-38页 |
| ·yl1突变体表型及主要农艺性状 | 第36-37页 |
| ·yl1突变体叶绿素含量及光合速率参数 | 第37-38页 |
| ·yl1突变体叶绿体超微结构观察 | 第38页 |
| ·小结 | 第38页 |
| ·yl1突变体基因克隆与生物信息学分析 | 第38-41页 |
| ·yl1突变体基因克隆 | 第38-39页 |
| ·突变基因生物信息学分析 | 第39-40页 |
| ·小结 | 第40-41页 |
| ·突变基因OsCAO1功能分析 | 第41-43页 |
| ·组织表达特性分析 | 第41页 |
| ·亚细胞定位分析 | 第41-42页 |
| ·yl2突变体表型分析 | 第42页 |
| ·小结 | 第42-43页 |
| ·OsCAO1互作蛋白筛选及其与OsCBSX3的相互作用 | 第43-46页 |
| ·OsCAO1互作蛋白筛选 | 第43-44页 |
| ·OsCAO1与OsCBSX3酵母体内互作验证 | 第44-45页 |
| ·小结 | 第45-46页 |
| 第四章 讨论 | 第46-48页 |
| 第五章 全文结论 | 第48-49页 |
| ·结论 | 第48页 |
| ·创新点 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |
| 作者简历 | 第58页 |