| 中文摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-9页 |
| 目录 | 第9-12页 |
| 引言 | 第12-15页 |
| 第一章 蛇床子素抗肝细胞肝癌作用的研究 | 第15-33页 |
| 1 材料和方法 | 第15-19页 |
| ·细胞株和细胞培养 | 第15页 |
| ·动物和试剂 | 第15-16页 |
| ·实验仪器 | 第16页 |
| ·药液配制 | 第16页 |
| ·HPLC 测定蛇床子素含量 | 第16-17页 |
| ·细胞增殖实验（MTT 法） | 第17页 |
| ·流式细胞仪检测细胞凋亡率 | 第17-18页 |
| ·流式细胞仪检测细胞周期 | 第18页 |
| ·肝癌小鼠模型实验 | 第18-19页 |
| ·蛇床子素在肝癌小鼠模型的吸收和分布 | 第19页 |
| ·统计学方法 | 第19页 |
| 2 实验结果 | 第19-31页 |
| ·蛇床子素最佳溶剂的确定 | 第19-20页 |
| ·蛇床子素对体外培养肝癌细胞株增殖的抑制作用 | 第20-21页 |
| ·蛇床子素诱导肝癌细胞株的凋亡 | 第21-23页 |
| ·蛇床子素对肝癌细胞株细胞周期的影响 | 第23-24页 |
| ·蛇床子素对荷肝癌小鼠模型的抗肿瘤作用 | 第24-27页 |
| ·蛇床子素腹腔注射在 Hepa1-6 种植 C57 小鼠肝癌模型中的吸收和分布 | 第27-29页 |
| ·不同给药次数和给药方式对蛇床子素抗肝癌效应的影响 | 第29-31页 |
| 3 讨论 | 第31-33页 |
| 第二章 蛇床子素诱导肝细胞肝癌凋亡机制的研究 | 第33-54页 |
| 1 材料和方法 | 第33-37页 |
| ·细胞株和细胞培养 | 第33页 |
| ·试剂 | 第33-34页 |
| ·实验仪器 | 第34页 |
| ·蛇床子素药液配制 | 第34-35页 |
| ·细胞 RNA 的提取 | 第35页 |
| ·Real-time PCR 检测 | 第35-36页 |
| ·蛋白印迹法检测细胞凋亡相关蛋白的表达 | 第36页 |
| ·EMSA 法测定 NF-κB 活性 | 第36-37页 |
| ·蛇床子素与 TRAIL 联合用药对 SMMC-7721 细胞增殖的实验 | 第37页 |
| ·统计学方法 | 第37页 |
| 2 实验结果 | 第37-50页 |
| ·蛇床子素对凋亡通路基因表达的影响 | 第37-40页 |
| ·蛇床子素对凋亡相关蛋白表达的调节 | 第40-46页 |
| ·蛇床子素对 PI3K/Akt 信号通路的影响 | 第46-48页 |
| ·蛇床子素与 TRAIL 联合用药对 SMMC-7721 细胞增殖的影响 | 第48-50页 |
| 3 讨论 | 第50-54页 |
| 第三章 蛇床子素对抗肿瘤免疫功能的增强效应 | 第54-78页 |
| 1 材料和方法 | 第54-58页 |
| ·细胞株和细胞培养 | 第54页 |
| ·动物和试剂 | 第54-55页 |
| ·实验仪器 | 第55页 |
| ·药液配制 | 第55页 |
| ·小鼠脾淋巴细胞悬液的制备 | 第55-56页 |
| ·脾细胞增殖实验 | 第56页 |
| ·肝癌小鼠模型实验 | 第56-57页 |
| ·淋巴细胞亚群比例的检测 | 第57页 |
| ·脾 CD4+CD25+Foxp3+调节性 T 细胞比例的检测 | 第57页 |
| ·血清中 IL-2 和 TNF-α的检测 | 第57-58页 |
| ·统计学方法 | 第58页 |
| 2 实验结果 | 第58-72页 |
| ·蛇床子素对体外培养脾淋巴细胞增殖的影响 | 第58-59页 |
| ·蛇床子素对 Hepa1-6 C57 小鼠肝癌模型胸腺和脾脏免疫器官的影响 | 第59-60页 |
| ·蛇床子素对 Hepa1-6 C57 小鼠肝癌模型脾脏中各淋巴细胞亚群的影响 | 第60-70页 |
| ·蛇床子素对 Hepa1-6 C57 小鼠肝癌模型肿瘤组织中 CD4+T 和 CD8+T细胞比例的影响 | 第70-71页 |
| ·蛇床子素对 Hepa1-6 C57 小鼠肝癌模型血清中的 IL-2 和 TNF-α水平的调节 | 第71-72页 |
| 3 讨论 | 第72-78页 |
| 结论 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-90页 |
| 攻读学位期间本人出版或公开发表的论著、论文 | 第90-91页 |
| 附录 1 TOP MAPS | 第91-96页 |
| 附录 2 主要试剂溶液配制方法 | 第96-98页 |
| 中英文缩略词汇表 | 第98-100页 |
| 致谢 | 第100-101页 |
