| 英文缩略表 | 第1-8页 |
| 中文摘要 | 第8-10页 |
| 英文摘要 | 第10-12页 |
| 引言 | 第12-28页 |
| 1 常见免疫抑制病的病原与发病 | 第12-17页 |
| 2 免疫抑制病的防制 | 第17-19页 |
| 3 免疫增强剂的研究现 | 第19-23页 |
| 4 动物源性免疫活性增强剂的研究现状 | 第23-26页 |
| 5 展望 | 第26-28页 |
| 研究内容 | 第28-52页 |
| 试验一盲肠扁桃体提取物免疫调节作用的研究 | 第28-36页 |
| 1 材料 | 第29-30页 |
| ·试剂及仪器 | 第29页 |
| ·实验动物及处理 | 第29-30页 |
| ·盲肠扁桃体提取物（终浓度为1096）制备 | 第30页 |
| 2 方法 | 第30-32页 |
| ·盲肠扁桃体提取物免疫增强作用的检测 | 第30-31页 |
| ·ELISA 法检测 IL-2 水平 | 第31页 |
| ·体外培养对淋巴细胞转化率的影响 | 第31-32页 |
| ·统计学处理 | 第32页 |
| 3 结果 | 第32-33页 |
| ·盲肠扁桃体提取物对雏鸡淋巴细胞转化率的影响 | 第32页 |
| ·细胞培养上清中 IL-2 水平的变化 | 第32-33页 |
| ·不同剂量提取物对体外受抑制淋巴细胞转化率的影响 | 第33页 |
| 4 讨论 | 第33-36页 |
| 试验二猪淋巴结免疫活性组分提取及其理化性质的研究 | 第36-45页 |
| 1 材料和方法 | 第37-40页 |
| ·材料 | 第37-38页 |
| ·方法 | 第38-40页 |
| ·实验动物及处理 | 第38页 |
| ·淋巴结提取物的制备 | 第38页 |
| ·提取物组分的分离 | 第38页 |
| ·MTT 比色法检测各组分及粗提取物的免疫活性 | 第38-39页 |
| ·MTT 法检测各组分经热变性后的免疫调节活性 | 第39页 |
| ·加脲的 Tricine-SDS-PAGE 电泳 | 第39-40页 |
| 2 结果 | 第40-43页 |
| ·BilLogic-LP 层析系统分离的各组分 | 第40页 |
| ·各组分及粗提取物对外周血淋巴细胞转化率的影响 | 第40-41页 |
| ·各组分经热浴后对淋巴细胞转化的影响 | 第41页 |
| ·免疫增强活性组分Ⅰ与组分Ⅱ分子量电泳定性 | 第41-43页 |
| 3 讨论 | 第43-45页 |
| 试验三全血培养与酶标仪联用检测淋巴细胞转化 | 第45-52页 |
| 1 材料与方法 | 第46-47页 |
| ·材料 | 第46页 |
| ·方法 | 第46-47页 |
| ·实验动物处理 | 第46-47页 |
| ·全血培养法培养鸡血 | 第47页 |
| ·MTT 比色法检测淋巴细胞转化率 | 第47页 |
| ·统计学处理 | 第47页 |
| 2 结果与分析 | 第47-50页 |
| ·不同时间 MTT 法测得的淋巴细胞转化率与上清吸光度的变化 | 第47-49页 |
| ·对照组上清经不同处理后吸光度值离散度变化 | 第49-50页 |
| 3 讨论 | 第50-52页 |
| 结论 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
| 攻读硕士期间发表的论文 | 第63页 |