| 第一章 文献综述 | 第1-32页 |
| 1．1 木聚糖及其提取方法 | 第12-16页 |
| 1．1．1 木聚糖简介 | 第12页 |
| 1．1．2 木聚糖的结构 | 第12-13页 |
| 1．1．3 木聚糖的制备方法 | 第13-15页 |
| 1．1．4 玉米芯的预处理 | 第15-16页 |
| 1．1．5 利用玉米芯提取木聚糖的意义 | 第16页 |
| 1．2 超声波法提取 | 第16-23页 |
| 1．2．1 超声波作用基本原理 | 第16-17页 |
| 1．2．2 超声波与媒质的作用及其产生的效应 | 第17-18页 |
| 1．2．3 超声波强化提取的机理 | 第18-19页 |
| 1．2．3．1 对细胞壁产生影响 | 第18页 |
| 1．2．3．2 促进细胞溶胀 | 第18-19页 |
| 1．2．3．3 强化传质速率 | 第19页 |
| 1．2．3．4 超声波的凝聚作用 | 第19页 |
| 1．2．4 超声波用于多糖提取 | 第19-20页 |
| 1．2．5 超声提取植物有效成分中应注意的问题 | 第20-22页 |
| 1．2．5．1 超声提取植物有效成分的参数选择 | 第20-21页 |
| 1．2．5．2 超声提取植物有效成分的溶剂选择 | 第21页 |
| 1．2．5．3 超声提取植物有效成分的温度选择 | 第21页 |
| 1．2．5．4 超声提取植物有效成分中酶的特殊作用 | 第21-22页 |
| 1．2．6 超声设备 | 第22-23页 |
| 1．3 纤维素酶酶解纤维素 | 第23-32页 |
| 1．3．1 纤维素介绍 | 第23页 |
| 1．3．2 原料预处理 | 第23-26页 |
| 1．3．2．1 物理方法 | 第24页 |
| 1．3．2．2 化学方法 | 第24-26页 |
| 1．3．2．3 物理—化学法 | 第26页 |
| 1．3．3 酶法水解的影响因素 | 第26-28页 |
| 1．3．3．1 纤维素结构对酶解影响 | 第26页 |
| 1．3．3．2 酶和酶用量 | 第26-27页 |
| 1．3．3．3 温度和pH对酶解的影响 | 第27页 |
| 1．3．3．4 抑制剂和活化剂对酶解的影响 | 第27-28页 |
| 1．3．4 纤维素酶的作用机理 | 第28-29页 |
| 1．3．4．1 C_1-Cx理论 | 第28页 |
| 1．3．4．2 协同降解模型 | 第28-29页 |
| 1．3．4．3 分子水平阐述酶解机制 | 第29页 |
| 1．3．5 纤维素的酶解工艺 | 第29-32页 |
| 1．3．5．1 酶解糖化工艺 | 第29-30页 |
| 1．3．5．2 同步酶解发酵工艺 | 第30页 |
| 1．3．5．3 同步产酶与酶解工艺 | 第30-31页 |
| 1．3．5．4 固定化酶糖化发酵工艺 | 第31-32页 |
| 第二章 常规碱法提取玉米芯木聚糖的研究 | 第32-44页 |
| 2．1 材料与方法 | 第32-35页 |
| 2．1．1 实验材料 | 第32页 |
| 2．1．2 主要化学试剂 | 第32页 |
| 2．1．3 主要仪器设备 | 第32-33页 |
| 2．1．4 实验方法 | 第33页 |
| 2．1．4．1 玉米芯的准备 | 第33页 |
| 2．1．4．2 玉米芯的预处理 | 第33页 |
| 2．1．4．3 木聚糖提取液的准备 | 第33页 |
| 2．1．5 分析方法 | 第33-35页 |
| 2．1．6 计算公式 | 第35页 |
| 2．2 结果与讨论 | 第35-43页 |
| 2．2．1 木聚糖质量检测方法的确立 | 第35页 |
| 2．2．2 搅拌与否对木聚糖提取率的影响 | 第35-36页 |
| 2．2．3 不同浓度氨水预处理对木聚糖提取率的影响 | 第36-37页 |
| 2．2．4 几种不同的预处理方法对木聚糖提取率的影响 | 第37-38页 |
| 2．2．5 固液比对木聚糖提取率的影响 | 第38页 |
| 2．2．6 时间对木聚糖提取率的影响 | 第38-39页 |
| 2．2．7 温度对木聚糖提取率的影响 | 第39-40页 |
| 2．2．8 碱提次数对木聚糖提取率的影响 | 第40-41页 |
| 2．2．9 醇沉pH值对木聚糖提取率的影响 | 第41页 |
| 2．2．10 醇沉体积对木聚糖提取率的影响 | 第41-42页 |
| 2．2．11 醇沉时间对木聚糖提取率的影响 | 第42-43页 |
| 2．2．12 NaOH浓度对木聚糖提取率的影响 | 第43页 |
| 2．3 小结 | 第43-44页 |
| 第三章 超声法提取木聚糖 | 第44-54页 |
| 3．1 引言 | 第44页 |
| 3．2 材料与方法 | 第44-46页 |
| 3．2．1 实验材料 | 第44页 |
| 3．2．2 主要化学试剂 | 第44-45页 |
| 3．2．3 主要仪器设备 | 第45-46页 |
| 3．2．4 实验方法 | 第46页 |
| 3．2．4．1 玉米芯的准备 | 第46页 |
| 3．2．4．2 木聚糖超声提取液的制备 | 第46页 |
| 3．2．5 分析方法 | 第46页 |
| 3．2．6 计算公式 | 第46页 |
| 3．3 结果与讨论 | 第46-53页 |
| 3．3．1 比较不同碱对木聚糖提取率的影响 | 第46-47页 |
| 3．3．2 NaOH浓度对木聚糖提取率的影响 | 第47-48页 |
| 3．3．3 超声时间对木聚糖提取率的影响 | 第48-49页 |
| 3．3．4 固液比对木聚糖提取率的影响 | 第49页 |
| 3．3．5 温度对木聚糖提取率的影响 | 第49-50页 |
| 3．3．6 超声功率对木聚糖提取率的影响 | 第50-51页 |
| 3．3．7 超声法提取木聚糖正交试验 | 第51-53页 |
| 3．3．7．1 实验方法 | 第51页 |
| 3．3．7．2 试验计划及试验结果分析 | 第51-53页 |
| 3．3．8 超声提取与常规提取的比较 | 第53页 |
| 3．4 小结 | 第53-54页 |
| 第四章 纤维素酶水解去半纤维素玉米芯的研究 | 第54-64页 |
| 4．1 引言 | 第54页 |
| 4．2 材料与方法 | 第54-56页 |
| 4．2．1 实验材料 | 第55页 |
| 4．2．2 主要化学试剂 | 第55页 |
| 4．2．3 主要仪器设备 | 第55页 |
| 4．2．4 实验方法 | 第55-56页 |
| 4．2．4．1 去半纤维素玉米芯的准备 | 第55页 |
| 4．2．4．2 实验流程 | 第55-56页 |
| 4．2．5 分析方法 | 第56页 |
| 4．2．6 计算公式 | 第56页 |
| 4．3 结果与讨论 | 第56-63页 |
| 4．3．1 用不同浓度NaOH去除半纤维素对酶解率的影响 | 第56页 |
| 4．3．2 添加防腐剂与否对酶解率的影响 | 第56-57页 |
| 4．3．3 酶与底物配比对酶解率的影响 | 第57-58页 |
| 4．3．3．1 酶量对酶解率的影响 | 第57-58页 |
| 4．3．3．2 底物量对酶解的影响 | 第58页 |
| 4．3．4 底物质量分数对酶解率的影响 | 第58-60页 |
| 4．3．5 温度对酶解率的影响 | 第60页 |
| 4．3．6 pH值对酶解的影响 | 第60-61页 |
| 4．3．7 时间对酶解的影响 | 第61-62页 |
| 4．3．8 酶种类对酶解的影响 | 第62-63页 |
| 4．4 小结 | 第63-64页 |
| 第五章 结论 | 第64-65页 |
| 5．1 结论 | 第64页 |
| 5．2 问题与建议 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第71页 |
