| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-12页 |
| 第一章 前言 | 第12-19页 |
| ·农杆菌介导法 | 第12-13页 |
| ·农杆菌介导籼稻遗传转化的研究历程 | 第13-14页 |
| ·农杆菌介导籼稻转化的主要影响因素 | 第14-18页 |
| ·受体材料的基因型、外植体类型及状态 | 第14-15页 |
| ·农杆菌菌株、载体和侵染方式的选择 | 第15-16页 |
| ·转化各阶段培养基和外源植物激素的影响 | 第16-17页 |
| ·标记基因和选择剂 | 第17-18页 |
| ·抗性愈伤组织的再生 | 第18页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第18-19页 |
| 第二章 籼稻成熟胚愈伤组织的高效诱导 | 第19-25页 |
| ·供试水稻品种 | 第19页 |
| ·主要仪器设备 | 第19页 |
| ·实验方法 | 第19-21页 |
| ·诱导阶段所需要的培养基设计 | 第19-20页 |
| ·高质量水稻成熟胚愈伤组织的诱导 | 第20-21页 |
| ·结果与讨论 | 第21-25页 |
| ·不同基因型籼稻不同培养基中愈伤组织的诱导效果 | 第21-23页 |
| ·确定籼稻成熟胚愈伤诱导的影响因素和水平 | 第23-24页 |
| ·讨论 | 第24-25页 |
| 第三章 籼稻农杆菌转化过程中各参数的优化 | 第25-33页 |
| ·实验材料 | 第25-26页 |
| ·受体品种 | 第25页 |
| ·菌株和质粒 | 第25页 |
| ·转化各步所用的培养基 | 第25页 |
| ·药品 | 第25页 |
| ·主要仪器设备 | 第25-26页 |
| ·实验方法 | 第26-27页 |
| ·农杆菌与愈伤组织共培养 | 第26页 |
| ·转化体的筛选方式设计 | 第26页 |
| ·筛选标记基因和筛选剂选择的实验设计 | 第26-27页 |
| ·实验结果 | 第27-30页 |
| ·筛选方式的确定 | 第27-28页 |
| ·标记基因和筛选剂的选择 | 第28-30页 |
| ·讨论 | 第30-33页 |
| ·转化体筛选的影响因素 | 第30-31页 |
| ·抗性愈伤的再分化影响因素 | 第31-33页 |
| 第四章 农杆菌介导籼稻成熟胚高效遗传转化体系的建立 | 第33-43页 |
| ·材料与方法 | 第33-34页 |
| ·菌株 | 第33页 |
| ·质粒载体 | 第33-34页 |
| ·工具酶和药品 | 第34页 |
| ·主要仪器设备 | 第34页 |
| ·实验方法 | 第34-36页 |
| ·农杆菌侵染方式、时间的设计 | 第34页 |
| ·干燥处理时间的安排 | 第34-35页 |
| ·荧光信号检测及分子验证方法 | 第35-36页 |
| ·N22 和 Q4041 的遗传转化 | 第36-39页 |
| ·农杆菌浸染方式、时间对籼稻转化率的确定 | 第36-37页 |
| ·干燥处理的结果 | 第37页 |
| ·转基因植株的抗除草剂分子鉴定 | 第37-39页 |
| ·讨论 | 第39页 |
| ·共培养前影响农杆菌侵染愈伤组织效果的因素 | 第39页 |
| ·干燥处理对愈伤组织分化的影响 | 第39页 |
| ·通过以上部分转化参数的优化．建立了新的农杆菌转化体系 | 第39-40页 |
| ·目前对提高籼稻遗传转化效率的策略总结 | 第40-43页 |
| ·改良转基因受体品种，创制一批适于高效遗传转化的籼稻受体基因型 | 第40页 |
| ·建立良好的籼稻品种胚性细胞系 | 第40-41页 |
| ·优化愈伤组织与农杆菌共培养条件，提高转化效率 | 第41页 |
| ·转化体的高效筛选及分化 | 第41页 |
| ·水稻遗传转化的发展方向 | 第41-43页 |
| 第五章 全文结论 | 第43-44页 |
| ·籼稻成熟胚愈伤组织的高频诱导 | 第43页 |
| ·侵染方式的改进 | 第43页 |
| ·确定干燥处理的时间 | 第43页 |
| ·抗性愈伤组织的有效筛选 | 第43页 |
| ·N22 和 Q4041 遗传转化体系的建立 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-51页 |
| 附录 | 第51-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
| 作者简历 | 第56页 |
