1 前言 | 第1-21页 |
·手性是自然界的本质属性 | 第8页 |
·手性药物分离的意义 | 第8-9页 |
·对映体药物对人体生理作用的差异 | 第9-10页 |
·对新药开发的要求 | 第10页 |
·手性色谱法 | 第10-18页 |
·手性固定相的分类 | 第11-12页 |
·刷型手性固定相的发展过程和拆分机理 | 第12-18页 |
·第一代刷型固定相 | 第13-15页 |
·第二代刷型固定相 | 第15-16页 |
·第三代刷型固定相 | 第16-17页 |
·其他类型的刷型手性固定相 | 第17-18页 |
·“刷型”手性固定相研究趋势 | 第18页 |
·色谱柱填装 | 第18-20页 |
·干法 | 第19页 |
·湿法 | 第19-20页 |
·本文主要工作 | 第20-21页 |
2 第二代刷型手性固定相DNB-Leucine CSP合成结果与讨论 | 第21-28页 |
·合成实验原料和试剂 | 第21页 |
·主要实验设备和仪器 | 第21-22页 |
·酰胺型手性固定相DNB-Leucine CSP合成实验 | 第22-24页 |
·硅胶的氨基烷化 | 第22-24页 |
·硅胶(YQG)的脱水 | 第22页 |
·硅胶(YQG)氨基烷化 | 第22页 |
·3,5-二硝基苯甲酰氯的制备 | 第22-23页 |
·DNB-Leucine的合成 | 第23页 |
·DNB-Leucine CSP的合成 | 第23-24页 |
·合成实验结果与分析 | 第24-28页 |
·3,5-二硝基苯甲酰氯的纯度检测 | 第24-25页 |
·DNB-Leucine纯度的检测 | 第25-26页 |
·DNB-Leucine熔点的检测 | 第25页 |
·DNB-Leucine光学纯度检测 | 第25-26页 |
·硅胶烷基化效果检测 | 第26页 |
·DNB-Leucine CSP合成结果的测定 | 第26-28页 |
3 色谱柱的填装实验 | 第28-41页 |
·柱的构造和分类 | 第28-29页 |
·关于色谱的有关术语 | 第29-32页 |
·湿法装柱要考虑的有关因素 | 第32-33页 |
·实验部分 | 第33-41页 |
·原料与试剂 | 第33页 |
·实验设备和仪器 | 第33-34页 |
·模拟装柱实验 | 第34-37页 |
·硅胶粒度的测定 | 第34-36页 |
·柱的填装的操作步骤 | 第36页 |
·静置时间 | 第36-37页 |
·压力和时间的讨论 | 第37页 |
·柱效的检验 | 第37-39页 |
·以苯为样品的测定 | 第37-38页 |
·以甲苯为样品测定 | 第38-39页 |
·DNB-Leucine CSP分析柱的填装 | 第39页 |
·DNB-Leucine CSP制备柱的填装 | 第39-41页 |
4 色谱柱性能的检测 | 第41-73页 |
·DNB-Leucine CSP分析柱柱效的检验 | 第41-61页 |
·不同体积流量理论板数(n)的测定 | 第41-50页 |
·对称度测定 | 第50-51页 |
·死时间(t_0)的测定 | 第51-52页 |
·手性拆分能力的测定 | 第52-61页 |
·克伦特罗对映体的拆分机理 | 第52-53页 |
·样品处理及分析 | 第53-57页 |
·5-[1-(3,5-二硝基苯甲酰基亚胺)-4-戊烯基]-苊对映体的拆分机理 | 第57页 |
·样品处理及分析 | 第57-61页 |
·DNB-Leucine CSP制备柱柱效的检验 | 第61-71页 |
·论板数(n)的测定 | 第61-64页 |
·对称度的测定 | 第64页 |
·死时间(t_0)的测定 | 第64-65页 |
·手性拆分能力的测定 | 第65-71页 |
·克伦特罗对映体的拆分 | 第65-68页 |
·5-[1-(3,5-二硝基苯甲酰基亚胺)-4-戊烯基]-苊对映体的拆分 | 第68-71页 |
·小结 | 第71-73页 |
5.结论 | 第73-75页 |
参考文献 | 第75-79页 |
作者在读期间的研究工作 | 第79-80页 |
致谢 | 第80-81页 |
声明 | 第81页 |