| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第9-22页 |
| 1 花生黄曲霉病研究进展 | 第10-14页 |
| ·黄曲霉及黄曲霉毒素 | 第10-11页 |
| ·黄曲霉侵染花生的机理 | 第11页 |
| ·花生对黄曲霉的抗性机理 | 第11-12页 |
| ·花生黄曲霉防治的主要途径 | 第12-14页 |
| 2 本实验相关抗性基因的介绍 | 第14-19页 |
| ·转录因子TTGI、TTGZ、WRKY、CBFZ和MYB的研究 | 第14-16页 |
| ·病程相关基因非表达子1(NPR1)基因 | 第16-17页 |
| ·核糖体失活蛋白(RIP)基因 | 第17页 |
| ·几丁质酶(CHI)基因 | 第17页 |
| ·兔防御素(MCP-1)基因 | 第17-18页 |
| ·白藜芦醇合成酶(RS)基因 | 第18页 |
| ·核基质结合序列(MAR)序列 | 第18-19页 |
| 3 植物启动子的研究进展 | 第19-20页 |
| 4 本研究的目的和意义 | 第20-22页 |
| 第二章 增强或改变果种皮组成结构的植物表达载体构建 | 第22-39页 |
| 1 材料与试剂 | 第22-23页 |
| 2 实验方法 | 第23-30页 |
| 3 结果与分析 | 第30-37页 |
| ·花生果种皮特异启动子驱动果种皮结构基因构建了特异表达载体 | 第30-33页 |
| ·所构建载体的测序鉴定结果 | 第33-37页 |
| 4 讨论 | 第37-39页 |
| ·花生果种皮结构组成成分影响着其花生荚果的抗逆性 | 第37-38页 |
| ·改变花生果皮代谢和组织结构将改变其对黄曲霉病侵染 | 第38-39页 |
| 第三章 增强果种皮抗逆性植物表达载体构建 | 第39-50页 |
| 1 材料与试剂 | 第39-40页 |
| 2 实验方法 | 第40-42页 |
| 3 结果与分析 | 第42-48页 |
| ·花生果种皮特异启动子驱动抗逆性基因构建了特异表达载体 | 第42-45页 |
| ·所构建载体的测序鉴定结果 | 第45-48页 |
| 4 讨论 | 第48-50页 |
| ·特异增强抗逆性和旱性是提高花生抗黄曲霉病的重要途径 | 第48页 |
| ·提高花生抗黄曲霉性应重视植株综合性水平 | 第48-50页 |
| 第四章 增强植株抗性酶合成植物表达载体构建 | 第50-68页 |
| 1 材料与试剂 | 第50-51页 |
| 2 实验方法 | 第51-55页 |
| 3 结果与分析 | 第55-66页 |
| ·花生果种皮特异启动子驱动抗性酶合成基因构建了特异表达载体 | 第55-61页 |
| ·所构建载体的测序鉴定结果 | 第61-66页 |
| 4 讨论 | 第66-68页 |
| ·花生抗黄曲霉侵染需要抗性功能蛋白参与 | 第66页 |
| ·在花生果种皮特异表达抗性功能基因是可安全提高花生抗曲霉性 | 第66-67页 |
| ·用RS基因导入有利于花生抗病和产品综合利用 | 第67-68页 |
| 第五章 植物超量表达载体的构建 | 第68-79页 |
| 1 材料与试剂 | 第68-69页 |
| 2 实验方法 | 第69-71页 |
| 3 结果与分析 | 第71-77页 |
| ·花生果种皮特异启动子驱动构建了特异超量表达载体 | 第71-74页 |
| ·所构建载体的测序鉴定结果 | 第74-77页 |
| 4 讨论 | 第77-79页 |
| ·植物转基因沉默现象及其原因分析 | 第77-78页 |
| ·构建超量表达载体可有效防止克隆基因沉默 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-84页 |
| 附录一 本研究所用到MARKER电泳图像示意图 | 第84-85页 |
| 附录二 本实验室所用载体的图谱 | 第85-86页 |
| 附录三 载体构建流程图 | 第86-101页 |
| 附录四 测序片段拼接结果 | 第101-115页 |
| 附录五 部分测序峰图 | 第115-124页 |
| 致谢 | 第124页 |
