缩氨基硫脲和苯腙类金属配合物的合成、结构、抗肿瘤活性及机制的研究

摘要第3-5页
Abstract第5-9页
第一章前言第9-23页
    1.1席夫碱及金属配合物的抗肿瘤简述第11-16页
        1.1.1缩氨基硫脲及其铁配合物的抗肿瘤研究第12-15页
        1.1.2缩苯甲酰肼(苯腙)及其金属配合物的抗肿瘤简述第15-16页
    1.2本文的选题依据及研究内容第16-17页
    参考文献第17-23页
第二章缩氨基硫脲配体和Fe(Ⅲ)配合物的合成、结构、抗肿瘤活性及其作用机制的研究第23-44页
    2.1实验材料第23-25页
        2.1.1主要仪器第23-24页
        2.1.2实验试剂第24页
        2.1.3细胞株第24-25页
    2.2实验方法第25-31页
        2.2.1配体及对应的Fe(Ⅲ)配合物的合成第25页
        2.2.2配体(La)及对应的Fe(Ⅲ)配合物(C)的表征第25-27页
            2.2.2.1配体(La)及Fe(Ⅲ)配合物(C1)的表征数据第25-26页
            2.2.2.2配体(La)及Fe(Ⅲ)配合物(C)的晶体结构测定第26-27页
        2.2.3密度泛函理论DensityFunctionalTheory(DFT)计算第27-28页
        2.2.4循环伏安法第28页
        2.2.5抗坏血酸氧化测定第28页
        2.2.6金属配合物与DNA的结合实验第28-29页
            2.2.6.1紫外光谱第28页
            2.2.6.2荧光光谱第28-29页
            2.2.6.3粘度实验第29页
        2.2.7C1与DNA相互作用(琼脂糖凝胶电泳实验)第29页
        2.2.8配合物C1的抗肿瘤细胞活性第29页
        2.2.9吖啶橙/溴化乙锭(AO/EB)荧光染色第29-30页
        2.2.10FITCAnnexinV/PI凋亡实验第30页
        2.2.11细胞周期分布实验第30页
        2.2.12细胞内活性氧(ROS)的检测第30页
        2.2.13线粒体膜电位改变分析(JC-1染色)第30页
        2.2.14Westernblot蛋白质印迹检测第30-31页
    2.3结果与讨论第31-43页
        2.3.1配体和铁(Ⅲ)配合物的晶体结构第31-32页
        2.3.2循环伏安法第32-33页
        2.3.3抗坏血酸氧化研究第33页
        2.3.4与DNA结合性能的研究第33-35页
        2.3.5琼脂糖凝胶电泳实验第35-36页
        2.3.6Fe(Ⅲ)配合物的抗肿瘤活性第36-37页
        2.3.7WesternBlot检测肿瘤细胞蛋白质表达水平及细胞内ROS的检测第37-38页
        2.3.8配合物C1可能的抗癌机制及对细胞周期的分布影响第38-39页
        2.3.9配合物C1在细胞凋亡过程中发挥的作用第39-40页
        2.3.10C1配合物对Bcl-2蛋白家族的表达量的影响第40-43页
    2.4本章小结第43-44页
第三章三种金属(Cu(Ⅱ)、Ni(Ⅱ)、Zn(Ⅱ))配合物的合成、功能和机制的研究第44-67页
    3.1引言第44页
    3.2实验材料第44-45页
        3.2.1实验仪器与试剂第44-45页
        3.2.2细胞株第45页
    3.3实验方法第45-50页
        3.3.1Cu(Ⅱ)、Ni(Ⅱ)和Zn(Ⅱ)配合物的合成第45-46页
        3.3.2Cu(Ⅱ)、Ni(Ⅱ)和Zn(Ⅱ)配合物的抗肿瘤活性(MTT法)第46页
        3.3.3FITCAnnexinV/PI凋亡实验第46-47页
        3.3.4细胞线粒体膜电位检测第47页
        3.3.5细胞内活性氧(ROS)的检测第47页
        3.3.6Westernblot实验第47-48页
        3.3.7癌细胞对配合物C1-C3的吸收第48页
        3.3.8配合物C1-C3与HSA的荧光猝灭研究第48-49页
        3.3.9分子对接(moleculardocking)第49页
        3.3.10Cu(Ⅱ)、Ni(Ⅱ)和Zn(Ⅱ)配合物与DNA的作用(琼脂糖凝胶电泳实验)第49-50页
        3.3.11Cu(Ⅱ)、Ni(Ⅱ)和Zn(Ⅱ)配合物对TopoⅠ的影响(琼脂糖凝胶电泳实验)第50页
    3.4Cu(Ⅱ)、Ni(Ⅱ)和Zn(Ⅱ)配合物的表征第50-56页
        3.4.1Cu(Ⅱ)、Ni(Ⅱ)和Zn(Ⅱ)配合物的晶体结构表征数据第50-53页
        3.4.2Cu(Ⅱ)、Ni(Ⅱ)和Zn(Ⅱ)配合物的晶体结构第53-56页
    3.5Cu(Ⅱ)、Ni(Ⅱ)和Zn(Ⅱ)配合物的抗肿瘤活性的比较第56-57页
    3.6Cu(Ⅱ)、Ni(Ⅱ)和Zn(Ⅱ)配合物的抗肿瘤机制的比较第57-63页
        3.6.1FITC-AnnexinV/PI双染对HepG2凋亡的检测分析第57-58页
        3.6.2JC-1荧光染色检测HepG2细胞的线粒体膜电位第58-59页
        3.6.3细胞内活性氧(ROS)的检测第59-60页
        3.6.4Westernblot实验检测肿瘤细胞的蛋白质表达水平第60-61页
        3.6.5Cu(Ⅱ)、Ni(Ⅱ)和Zn(Ⅱ)配合物在HepG2细胞被吸收的情况分析第61-62页
        3.6.6Cu(Ⅱ)、Ni(Ⅱ)和Zn(Ⅱ)配合物与DNA相互作用结果第62页
        3.6.7Cu(Ⅱ)、Ni(Ⅱ)和Zn(Ⅱ)配合物与DNATopoⅠ相互作用结果第62-63页
    3.7Cu(Ⅱ)、Ni(Ⅱ)和Zn(Ⅱ)配合物与人血清白蛋白(HSA)的相互作用第63-66页
    3.8本章小结第66-67页
第四章总结与展望第67-69页
参考文献第69-78页
攻读硕士期间发表的论文第78-79页
致谢第79-80页

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