| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 1 绪论 | 第9-16页 |
| 1.1 双组分信号系统概述 | 第9-12页 |
| 1.2 植物启动子的研究进展 | 第12-15页 |
| 1.2.1 植物启动子的核心结构 | 第12-13页 |
| 1.2.2 植物启动子的分类 | 第13-14页 |
| 1.2.3 启动子的研究展望 | 第14-15页 |
| 1.3 实验目的和意义 | 第15-16页 |
| 2 PHK4基因原核表达载体和启动子驱动GUS的植物表达载体构建 | 第16-30页 |
| 2.1 实验材料 | 第16-17页 |
| 2.1.1 材料 | 第16页 |
| 2.1.2 实验试剂和药品 | 第16-17页 |
| 2.1.3 菌株及质粒 | 第17页 |
| 2.1.4 引物 | 第17页 |
| 2.1.5 主要仪器设备 | 第17页 |
| 2.2 实验方法 | 第17-26页 |
| 2.2.1 PHK4基因及启动子的克隆 | 第17-23页 |
| 2.2.2 PHK4基因原核表达载体构建 | 第23-25页 |
| 2.2.3 PHK4启动子植物表达载体构建 | 第25-26页 |
| 2.3 结果与分析 | 第26-30页 |
| 2.3.1 大白菜总RNA的提取及CDS序列全长的扩增 | 第26-27页 |
| 2.3.2 PHK4基因启动子的克隆 | 第27-28页 |
| 2.3.3 PHK4基因原核表达载体构建 | 第28-29页 |
| 2.3.4 PHK4基因启动子植物表达载体构建 | 第29-30页 |
| 3 PHK4基因原核表达研究 | 第30-35页 |
| 3.1 实验材料 | 第30-31页 |
| 3.1.1 菌种 | 第30页 |
| 3.1.2 试剂 | 第30页 |
| 3.1.3 主要实验仪器 | 第30-31页 |
| 3.2 实验方法 | 第31-33页 |
| 3.2.1 pET-30a-PHK4重组质粒转化感受态细胞BL21(DE3) | 第31页 |
| 3.2.2 pET-30a-PHK4重组质粒的原核表达 | 第31-33页 |
| 3.3 结果与分析 | 第33-35页 |
| 3.3.1 pET-30a-PHK4重组质粒在BL21(DE3)中的表达 | 第33页 |
| 3.3.2 pET-30a-PHK4重组质粒在BL21(DE3)中的表达优化 | 第33页 |
| 3.3.3 PHK4基因蛋白表达形式的鉴定 | 第33-35页 |
| 4 植物表达研究 | 第35-44页 |
| 4.1 PHK4基因植物表达研究 | 第35-42页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第35页 |
| 4.1.2 实验方法 | 第35-38页 |
| 4.1.3 结果与分析 | 第38-42页 |
| 4.2 PHK4基因启动子植物表达研究 | 第42-44页 |
| 4.2.1 实验方法 | 第42-43页 |
| 4.2.2 结果与分析 | 第43-44页 |
| 5 讨论 | 第44-45页 |
| 结论 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-49页 |
| 附录A 缩略词表 | 第49-50页 |
| 附录B MS培养基配方 | 第50-51页 |
| 附录C pET-30a(+)图谱 | 第51-52页 |
| 攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第52-53页 |
| 致谢 | 第53页 |
