| 摘要 | 第3-4页 |
| abstract | 第4-5页 |
| 第1章 引言 | 第10-36页 |
| 1.1 光控脱除保护基 | 第10-15页 |
| 1.1.1 光控脱除保护基概述 | 第10-11页 |
| 1.1.2 邻硝基苄基类及其光解机理 | 第11-12页 |
| 1.1.3 对羟基苯甲酮类及其光解机理 | 第12-13页 |
| 1.1.4 香豆素类及其光解机理 | 第13-14页 |
| 1.1.5 其他光控脱除保护基 | 第14-15页 |
| 1.2 光激活荧光分子及其应用 | 第15-23页 |
| 1.2.1 光激活传统荧光分子 | 第16-18页 |
| 1.2.2 光激活聚集诱导荧光(AIE)分子 | 第18-22页 |
| 1.2.3 光激活荧光蛋白 | 第22-23页 |
| 1.3 光激活生物分子及其应用 | 第23-34页 |
| 1.3.1 光激活生物小分子 | 第23-25页 |
| 1.3.2 光激活多肽或蛋白 | 第25-27页 |
| 1.3.3 光激活核酸 | 第27-34页 |
| 1.4 本论文的研究内容和创新点 | 第34-36页 |
| 1.4.1 研究内容简介 | 第34-35页 |
| 1.4.2 本论文的创新点 | 第35-36页 |
| 第2章 DNA适体修饰的包覆有AIE分子的硅纳米传感器 | 第36-58页 |
| 2.1 引言 | 第36-38页 |
| 2.2 实验部分 | 第38-45页 |
| 2.2.1 试剂 | 第38页 |
| 2.2.2 仪器 | 第38-39页 |
| 2.2.3 化合物合成 | 第39-41页 |
| 2.2.4 包覆AIE分子或FITC的硅纳米粒子的合成 | 第41-42页 |
| 2.2.5 DNA共价修饰包覆有AIE分子的硅纳米粒子 | 第42页 |
| 2.2.6 Cy5标记核仁素抗体和DNA | 第42-43页 |
| 2.2.7 荧光共聚焦显微镜细胞成像实验 | 第43-44页 |
| 2.2.8 流式细胞分析实验 | 第44页 |
| 2.2.9 高效液相色谱检测光激活传感器的分解效率实验 | 第44页 |
| 2.2.10 细胞毒性实验 | 第44-45页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第45-57页 |
| 2.3.1 AIE分子的聚集诱导荧光性质 | 第45-46页 |
| 2.3.2 包覆AIE分子的硅纳米粒子的表征 | 第46-49页 |
| 2.3.3 DNA适体修饰包覆有AIE分子的硅纳米粒子的表征 | 第49-51页 |
| 2.3.4 细胞成像及流式细胞分析验证传感器的特异性 | 第51-53页 |
| 2.3.5 共定位细胞成像 | 第53-55页 |
| 2.3.6 光激活传感器的研究 | 第55-57页 |
| 2.4 本章小结 | 第57-58页 |
| 第3章 新型光控基团用于DNA合成后硫代磷酸骨架的修饰及对核酸酶活性的调控 | 第58-79页 |
| 3.1 引言 | 第58-60页 |
| 3.2 实验部分 | 第60-65页 |
| 3.2.1 试剂 | 第60-61页 |
| 3.2.2 仪器 | 第61页 |
| 3.2.3 化合物合成 | 第61-63页 |
| 3.2.4 TEEP-OH修饰DNA | 第63页 |
| 3.2.5 MALDI-TOF质谱样品基质配制 | 第63页 |
| 3.2.6 凝胶电泳实验步骤 | 第63页 |
| 3.2.7 荧光时间曲线监测反应活性实验 | 第63-64页 |
| 3.2.8 凝胶电泳验证催化断裂情况 | 第64页 |
| 3.2.9 细胞成像实验 | 第64-65页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第65-77页 |
| 3.3.1 修饰及光照脱除TEEP-OH后DNA的表征 | 第65-67页 |
| 3.3.2 二乙基硫代磷酸模拟DNA硫代磷酸骨架验证反应产物及机理 | 第67-70页 |
| 3.3.3 二乙基硫代磷酸模拟DNA硫代磷酸骨架推测光照脱除机理 | 第70-73页 |
| 3.3.4 修饰TEEP-OH的DNA酶光照前后催化底物断裂活性分析 | 第73-76页 |
| 3.3.5 细胞成像 | 第76-77页 |
| 3.4 本章小结 | 第77-79页 |
| 第4章 全文总结 | 第79-81页 |
| 参考文献 | 第81-97页 |
| 致谢 | 第97-99页 |
| 个人简历、在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第99-100页 |
