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羊地方性鼻内肿瘤病毒SU基因的原核表达及RT-PCR方法和间接ELISA的建立与应用

中文摘要第3-5页
ABSTRACT第5-6页
简写词表第7-14页
第一章 ENTV综述第14-24页
    1、ENTV的概述第14页
    2、ENTV病原学第14-17页
        2.1 病毒形态结构第14-15页
        2.2 致病机理第15页
        2.3 临床症状第15-16页
        2.4 病理组织学研究第16页
        2.5 培养特性第16页
        2.6 ENTV理化性质研究第16-17页
    3 基因组结构和功能第17-20页
        3.1 LTR基因第17页
        3.2 gag基因第17-18页
        3.3 pro基因第18页
        3.4 Pol基因第18页
        3.5 env基因第18-20页
            3.5.1 表面蛋白(SU)第19页
            3.5.2 穿膜蛋白(TM)第19-20页
    4 ENTV鼻内肿瘤病毒的分布和流行第20-21页
        4.1 ENTV鼻内肿瘤病毒的分布第20页
        4.2 ENTV羊鼻内肿瘤病毒的流行因素第20-21页
            4.2.1 病毒因素第20页
            4.2.2 环境因素第20-21页
            4.2.3 宿主因素第21页
    5 ENTV羊鼻内肿瘤病毒的诊断方法研究进展第21-22页
        5.1 临床诊断第21页
        5.2 病理诊断第21-22页
        5.3 ENTV羊鼻内肿瘤病毒实验室检测技术第22页
            5.3.1 RT-PCR技术第22页
            5.3.2 ELISA第22页
    6 防治措施第22-23页
        6.1 加强饲养管理第22-23页
        6.2 抗原检测第23页
    7 展望第23-24页
第二章 ENTV RT-PCR检测方法的建立与应用第24-35页
    1 材料第24-25页
        1.1 ENTV阳性病料及菌株第24页
        1.2 主要试剂和耗材第24页
        1.3 溶液配制第24-25页
        1.4 主要仪器及分析软件第25页
    2 方法第25-30页
        2.1 引物的设计与合成第25页
        2.2 ENTV病毒核酸的抽提第25-26页
        2.3 ENTV RT-PCR方法的建立第26-30页
            2.3.1 目的基因的扩增第26-27页
                2.3.1.1 病毒核酸的反转录第26页
                2.3.1.2 目的基因的扩增第26-27页
            2.3.2 目的基因的TA克隆和鉴定第27-29页
                2.3.2.1 RT-PCR产物目的基因片段的回收纯化第27页
                2.3.2.2 病毒基因cDNA与T载体连接第27页
                2.3.2.3 感受态细胞的制备第27-28页
                2.3.2.4 细胞克隆转化第28页
                2.3.2.5 重组克隆菌的筛选培养第28页
                2.3.2.6 重组质粒的提取第28-29页
                2.3.2.7 TA克隆质粒的PCR法鉴定第29页
                2.3.2.8 TA克隆质粒测序鉴定第29页
            2.3.3 特异性试验第29-30页
            2.3.4 敏感性试验第30页
            2.3.5 重复性试验第30页
            2.3.6 收集样品的检测第30页
    3 结果第30-33页
        3.1 目的基因的扩增第30页
        3.2 目的基因的TA克隆和鉴定第30-31页
        3.3 RT-PCR的特异性试验第31-32页
        3.4 RT-PCR的敏感性试验第32页
        3.5 RT-PCR的重复性试验第32页
        3.6 收集样品的检测第32-33页
    4 讨论第33-35页
第三章 ENTV SU蛋白的原核表达第35-56页
    1 材料第35-37页
        1.1 ENTV病毒核酸及菌株第35页
        1.2 主要试剂第35-36页
        1.3 主要仪器第36页
        1.4 溶液配制第36-37页
    2 方法第37-44页
        2.1 引物的设计第37页
        2.2 病毒RNA的提取第37页
        2.3 SU基因的扩增及鉴定第37-38页
            2.3.1 病毒核酸的反转录第37页
            2.3.2 目的基因的PCR第37页
            2.3.3 SU基因的TA克隆第37页
            2.3.4 TA克隆质粒的PCR鉴定第37-38页
            2.3.5 TA克隆质粒测序鉴定第38页
        2.4 SU基因的生物信息学分析第38-39页
            2.4.1 核苷酸多序列分析第38页
            2.4.2 稀有密码子分析第38页
            2.4.3 CpG岛分析第38页
            2.4.4 ENTV-SU基因氨基酸序列分析第38页
            2.4.5 二级结构分析第38页
            2.4.6 亲疏水性分析第38页
            2.4.7 信号肽分析第38-39页
            2.4.8 跨膜区分析第39页
        2.5 pET-SU原核表达载体的制备及鉴定第39-41页
            2.5.1 目的片段的制备第39页
            2.5.2 pET-32a(+)的制备第39-40页
            2.5.3 pET-SU的构建第40页
            2.5.4 pET-SU转化DH5α及鉴定第40-41页
            2.5.5 pET-SU转化E.coli Rosetta(DE3)及鉴定第41页
        2.6 重组表达菌的诱导表达第41-42页
            2.6.1 IPTG浓度的优化第41页
            2.6.2 诱导时间的优化第41页
            2.6.3 融合表达蛋白的SDS-PAGE电泳检测第41-42页
        2.7 重组表达蛋白的可溶性检测第42页
        2.8 重组蛋白的纯化及Western Blot分析第42-44页
            2.8.1 重组蛋白制备第42-43页
            2.8.2 ENTV重组SU蛋白的纯化第43页
            2.8.3 蛋白含量的测定第43页
            2.8.4 抗ENTV病毒血清的制备第43-44页
            2.8.5 重组表达蛋白的Western blot鉴定第44页
    3 结果第44-55页
        3.1 SU基因的扩增第44-45页
        3.2 病毒基因的TA克隆和鉴定第45-46页
        3.3 SU基因的生物信息学分析第46-51页
            3.3.1 ENTV-SU基因测序结果第46-47页
            3.3.2 核苷酸序列同源性及进化树分析第47-48页
            3.3.3 稀有密码子分析第48-49页
            3.3.4 CpG岛分析第49页
            3.3.5 ENTV-SU基因氨基酸序列分析第49页
            3.3.6 二级结构分析第49-50页
            3.3.7 亲疏水性分析第50页
            3.3.8 信号肽分析第50-51页
            3.3.9 跨膜区分析第51页
        3.4 rossta pET32a-SU的原核表达的构建和鉴定第51-52页
        3.5 IPTG诱导浓度的优化第52-53页
        3.6 诱导时间的优化第53-54页
        3.7 pET-SU蛋白的可溶性检测第54页
        3.8 抗ENTV病毒血清的制备第54页
        3.9 重组蛋白SU的纯化以及Western Blot分析第54-55页
    4 讨论第55-56页
第四章 ENTV间接ELISA检测方法的建立第56-67页
    1 实验材料第56-57页
        1.1 质粒构建第56页
        1.2 血清第56页
        1.3 试剂第56页
        1.4 配制溶液第56-57页
        1.5 仪器第57页
    2 试验方法第57-60页
        2.1 SU蛋白的表达纯化第57页
            2.1.1 SU蛋白收集第57页
            2.1.2 ENTV重组SU蛋白的纯化第57页
        2.2 蛋白含量的测定第57-58页
        2.3 ENTV-SU-ELISA的初步建立第58-59页
            2.3.1 抗原抗体最适稀释度测定第58页
            2.3.2 血清最适反应时间的测定第58页
            2.3.3 封闭最适液浓度测定第58-59页
            2.3.4 最适底物反应时间的测定第59页
            2.3.5 酶标二抗作用时间和浓度测定第59页
            2.3.6 血清阴阳性的判定第59页
        2.4 重复性试验第59-60页
            2.4.1 批间重复第59页
            2.4.2 批内重复第59-60页
        2.5 阻断试验第60页
        2.6 收集样品的检测第60页
    3 结果与分析第60-65页
        3.1 抗原和抗体最佳稀释浓度的确定第60-61页
        3.2 血清最适结合时间的确定第61页
        3.3 最适封闭液的确定第61-62页
        3.4 底物反应时间的确定第62页
        3.5 酶标二抗最佳作用条件的确定第62-63页
        3.6 血清阴阳性判定第63页
        3.7 重复性试验第63-64页
            3.7.1 批间重复第63页
            3.7.2 批内重复第63-64页
        3.8 阻断试验第64页
        3.9 收集样品的检测第64-65页
    4 讨论第65-67页
参考文献第67-72页
致谢第72页

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