| 摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-11页 |
| 缩略语词汇表 | 第12-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-34页 |
| 第一节 植物气体信号分子研究现状 | 第14-26页 |
| 1.1.1 植物气体信号分子 | 第14页 |
| 1.1.2 植物一氧化碳研究现状 | 第14-20页 |
| 1.1.3 植物硫化氢研究现状 | 第20-26页 |
| 第二节 重金属耐性的调控机制 | 第26-30页 |
| 1.2.1 重金属污染 | 第26页 |
| 1.2.2 重金属的毒性 | 第26-27页 |
| 1.2.3 重金属耐性的调控机制 | 第27-30页 |
| 第三节 谷胱甘肽及同型谷胱甘肽与氧化还原稳态 | 第30-32页 |
| 1.3.1 氧化还原稳态 | 第30页 |
| 1.3.2 植物谷胱甘肽合成与调节 | 第30-31页 |
| 1.3.3 豆科植物中的同型谷胱甘肽 | 第31页 |
| 1.3.4 (同型)谷胱甘肽增加植物对重金属胁迫耐性的机制 | 第31-32页 |
| 第四节 本研究的目的和意义 | 第32-34页 |
| 第二章 研究方案及技术路线 | 第34-36页 |
| 第三章 镉诱导的紫花苜蓿幼苗根中HO-1的表达与谷胱甘肽的耗竭有关 | 第36-52页 |
| 3.1 引言 | 第36-37页 |
| 3.2 材料与方法 | 第37-40页 |
| 3.2.1 材料培养 | 第37页 |
| 3.2.2 试剂 | 第37页 |
| 3.2.3 材料处理 | 第37页 |
| 3.2.4 测定方法 | 第37-40页 |
| 3.3 结果与分析 | 第40-49页 |
| 3.3.1 不同浓度镉处理不同时间对紫花苜蓿根部TBARS含量的影响 | 第40-41页 |
| 3.3.2 镉处理不同时间对AsA含量的影响 | 第41-42页 |
| 3.3.3 不同浓度镉对还原型GSH和AsA含量以及HO-1表达的影响 | 第42-43页 |
| 3.3.4 镉和DEM对GSH和AsA含量及HO-1表达的影响 | 第43-44页 |
| 3.3.5 镉诱导的质膜完整性丧失、脂质过氧化被GSH的耗竭和添加加强或逆转 | 第44-46页 |
| 3.3.6 GSH耗竭诱导HO-1的表达 | 第46-47页 |
| 3.3.7 GSH的耗竭在转录水平上对HO-1表达进行调控 | 第47-48页 |
| 3.3.8 镉和DEM引起的GSH耗竭与HO-1的诱导被添加AsA逆转或加强 | 第48-49页 |
| 3.4 讨论 | 第49-52页 |
| 第四章 水杨酸诱导的血红素加氧酶-1通过调节谷胱甘肽稳态和氧化还原平衡来缓解镉胁迫 | 第52-78页 |
| 4.1 引言 | 第52-53页 |
| 4.2 材料与方法 | 第53-57页 |
| 4.2.1 实验材料与试剂 | 第53-54页 |
| 4.2.2 TBARS含量测定 | 第54页 |
| 4.2.3 抗坏血酸含量测定 | 第54页 |
| 4.2.4 叶绿素含量测定 | 第54页 |
| 4.2.5 HPLC分析小分子硫醇含量 | 第54-55页 |
| 4.2.6 吡啶核苷酸含量测定 | 第55-56页 |
| 4.2.7 组织化学染色 | 第56页 |
| 4.2.8 Cd含量测定 | 第56页 |
| 4.2.9 酶活性分析 | 第56-57页 |
| 4.2.10 MsHO1 western blot分析 | 第57页 |
| 4.2.11 荧光定量RT-PCR分析 | 第57页 |
| 4.2.12 激光共聚焦测定ROS | 第57页 |
| 4.2.13 数据分析 | 第57页 |
| 4.3 结果与分析 | 第57-73页 |
| 4.3.1 脂质过氧化分析 | 第57-60页 |
| 4.3.2 组织化学染色 | 第60-62页 |
| 4.3.3 SA诱导的HO-1特异性地介导对细胞的保护作用 | 第62页 |
| 4.3.4 镉的含量 | 第62页 |
| 4.3.5 ZnPPIX抑制SA和haemin诱导的MsHO1表达 | 第62-65页 |
| 4.3.6 抗氧化酶活性及其转录本分析 | 第65页 |
| 4.3.7 细胞氧化还原稳态的重塑 | 第65-69页 |
| 4.3.8 GSH/hGSH和AsA代谢相关基因表达分析 | 第69-73页 |
| 4.4 讨论 | 第73-78页 |
| 4.4.1 HO-1介导SA对镉毒性和氧化伤害的缓解作用 | 第73-74页 |
| 4.4.2 HO-1保护作用的分子机理:调节氧化还原稳态 | 第74-78页 |
| 第五章 硫化氢通过调节同型谷胱甘肽稳态增强紫花苜蓿对镉的耐性 | 第78-108页 |
| 5.1 引言 | 第78-79页 |
| 5.2 材料与方法 | 第79-82页 |
| 5.2.1 实验材料与试剂 | 第79页 |
| 5.2.2 硫化氢含量测定 | 第79-80页 |
| 5.2.3 LCD和DCD活性测定 | 第80页 |
| 5.2.4 鲜重测定 | 第80页 |
| 5.2.5 TBARS含量测定 | 第80页 |
| 5.2.6 总的谷胱甘肽含量测定 | 第80页 |
| 5.2.7 HPLC分析硫醇含量 | 第80-81页 |
| 5.2.8 MCB荧光染色分析 | 第81页 |
| 5.2.9 组织化学染色 | 第81页 |
| 5.2.10 荧光定量RT-PCR分析 | 第81页 |
| 5.2.11 镉含量的测定 | 第81页 |
| 5.2.12 激光共聚焦测定ROS | 第81页 |
| 5.2.13 数据分析 | 第81-82页 |
| 5.3 结果与分析 | 第82-103页 |
| 5.3.1 镉胁迫对H_2S的代谢与氧化还原平衡的影响 | 第82-84页 |
| 5.3.2 NaHS对镉毒害的缓解效应 | 第84-86页 |
| 5.3.3 NaHS的缓解作用与H_2S有关 | 第86-87页 |
| 5.3.4 H_2S对镉胁迫下(h)GSH含量的影响 | 第87-88页 |
| 5.3.5 H_2S对镉胁迫下(h)GSH代谢基因的影响 | 第88-89页 |
| 5.3.6 H_2S供体、合成抑制剂和外源GSH对镉耐性和(h)GSH含量的影响 | 第89-92页 |
| 5.3.7 H_2S供体、合成抑制剂和外源GSH对镉胁迫下紫花苜蓿根部小分子量硫醇含量及总硫醇在根尖分布的影响 | 第92-94页 |
| 5.3.8 (h)GSH代谢有关基因表达对镉和H_2S的响应 | 第94-96页 |
| 5.3.9 H_2S对镉胁迫下紫花苜蓿根尖ROS积累和质膜完整性的影响 | 第96-97页 |
| 5.3.10 BSO和GSH处理对H_2S缓解镉毒害的影响 | 第97-100页 |
| 5.3.11 NaHS、PAG、CO和ZnPPIX对Cd胁迫的影响 | 第100-102页 |
| 5.3.12 NaHS、haemin和ZnPPIX对HO-1表达的影响 | 第102-103页 |
| 5.4 讨论 | 第103-108页 |
| 全文讨论与结论 | 第108-110页 |
| 创新点及展望 | 第110-112页 |
| 参考文献 | 第112-128页 |
| 附录 | 第128-138页 |
| 发表的学术论文 | 第138-140页 |
| 致谢 | 第140页 |
