| 摘要 | 第8-11页 |
| Abstract | 第11-15页 |
| 第一章 绪论 | 第16-28页 |
| 1 茯苓 | 第16-18页 |
| 1.1 茯苓 | 第16-17页 |
| 1.2 茯苓资源及产业发展 | 第17-18页 |
| 2 茯苓多糖 | 第18-25页 |
| 2.1 茯苓多糖结构 | 第18-19页 |
| 2.2 茯苓多糖生物学活性 | 第19-22页 |
| 2.2.1 增强免疫功能 | 第19-20页 |
| 2.2.2 抗肿瘤功能 | 第20-21页 |
| 2.2.3 抗氧化功能 | 第21页 |
| 2.2.4 抗菌、抗病毒作用 | 第21-22页 |
| 2.2.5 其它作用 | 第22页 |
| 2.3 茯苓多糖降解技术研究进展 | 第22-25页 |
| 2.3.1 化学降解技术 | 第22-24页 |
| 2.3.2 物理降解技术 | 第24页 |
| 2.3.3 生物降解技术 | 第24-25页 |
| 3 研究目的和意义 | 第25-26页 |
| 4 主要研究内容及技术路线 | 第26-28页 |
| 4.1 主要研究内容 | 第26-27页 |
| 4.2 技术路线 | 第27-28页 |
| 第二章 茯苓多糖转化工艺研究 | 第28-57页 |
| 第一节 微生物发酵转化茯苓多糖工艺研究 | 第28-42页 |
| 1 材料与方法 | 第29-32页 |
| 1.1 材料、试剂与仪器设备 | 第29页 |
| 1.1.1 材料 | 第29页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第29页 |
| 1.1.3 主要仪器设备 | 第29页 |
| 1.2 试验方法 | 第29-32页 |
| 1.2.1 苯酚-硫酸法测定茯苓水溶性多糖含量 | 第29-30页 |
| 1.2.1.1 显色原理 | 第29-30页 |
| 1.2.1.2 标准曲线的制作 | 第30页 |
| 1.2.1.3 样品的测定 | 第30页 |
| 1.2.2 茯苓适生菌的筛选、分离与鉴定 | 第30-31页 |
| 1.2.2.1 适生菌的分离及纯化 | 第30页 |
| 1.2.2.2 菌落形态鉴定 | 第30-31页 |
| 1.2.2.3 分子生物学鉴定 | 第31页 |
| 1.2.3 不同适生菌发酵转化茯苓多糖差异性研究 | 第31页 |
| 1.2.4 黑曲霉发酵转化茯苓多糖工艺研究 | 第31-32页 |
| 1.2.4.1 单因素试验 | 第31页 |
| 1.2.4.2 响应面优化试验 | 第31-32页 |
| 1.2.4.3 验证试验 | 第32页 |
| 2 结果与分析 | 第32-42页 |
| 2.1 葡萄糖标准曲线绘制 | 第32页 |
| 2.2 茯苓适生菌的筛选、分离与鉴定 | 第32-34页 |
| 2.3 发酵转化茯苓优势菌的筛选 | 第34-35页 |
| 2.4 黑曲霉发酵转化茯苓多糖工艺研究 | 第35-42页 |
| 2.4.1 单因素试验 | 第35-38页 |
| 2.4.1.1 料水比含量的确定 | 第35-36页 |
| 2.4.1.2 接种量的确定 | 第36页 |
| 2.4.1.3 发酵时间的确定 | 第36-37页 |
| 2.4.1.4 发酵温度的确定 | 第37-38页 |
| 2.4.1.5 初始pH值的确定 | 第38页 |
| 2.4.2 响应面优化试验 | 第38-41页 |
| 2.4.2.1 确定影响发酵的关键因素 | 第38-39页 |
| 2.4.2.2 发酵条件的响应面优化 | 第39-41页 |
| 2.4.3 验证试验结果分析 | 第41-42页 |
| 第二节 酶解转化茯苓多糖技术研究 | 第42-49页 |
| 1 材料与方法 | 第42-44页 |
| 1.1 材料、试剂与仪器设备 | 第42页 |
| 1.1.1 材料 | 第42页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第42页 |
| 1.1.3 主要仪器设备 | 第42页 |
| 1.2 试验方法 | 第42-44页 |
| 1.2.1 β-葡聚糖酶酶解转化茯苓多糖单因素试验 | 第42-43页 |
| 1.2.1.1 酶解反应温度的影响 | 第42-43页 |
| 1.2.1.2 酶解反应初始pH值的影响 | 第43页 |
| 1.2.1.3 酶解反应时间的影响 | 第43页 |
| 1.2.1.4 酶解反应酶用量的影响 | 第43页 |
| 1.2.2 β-葡聚糖酶酶解转化茯苓多糖正交试验 | 第43-44页 |
| 1.2.3 验证试验 | 第44页 |
| 2 结果与分析 | 第44-49页 |
| 2.1 单因素试验 | 第44-46页 |
| 2.1.1 酶解反应温度的影响 | 第44-45页 |
| 2.1.2 酶解反应pH值的影响 | 第45页 |
| 2.1.3 酶解反应时间的影响 | 第45-46页 |
| 2.1.4 酶解反应酶用量的影响 | 第46页 |
| 2.2 正交试验 | 第46-48页 |
| 2.3 验证试验 | 第48-49页 |
| 第三节 发酵—酶解协同转化茯苓多糖技术研究 | 第49-55页 |
| 1 材料与方法 | 第49-50页 |
| 1.1 材料、试剂与仪器设备 | 第49页 |
| 1.1.1 材料 | 第49页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第49页 |
| 1.1.3 主要仪器设备 | 第49页 |
| 1.2 试验方法 | 第49-50页 |
| 1.2.1 发酵-酶解协同转化茯苓多糖单因素试验 | 第49-50页 |
| 1.2.2 发酵-酶解协同转化茯苓多糖正交试验 | 第50页 |
| 1.2.3 验证试验 | 第50页 |
| 2 结果与分析 | 第50-55页 |
| 2.1 单因素试验 | 第50-53页 |
| 2.1.1 发酵-酶解反应温度的影响 | 第50-51页 |
| 2.1.2 发酵-酶解反应pH值的影响 | 第51-52页 |
| 2.1.3 发酵-酶解反应时间的影响 | 第52-53页 |
| 2.1.4 发酵-酶解反应酶用量的影响 | 第53页 |
| 2.2 正交试验 | 第53-55页 |
| 2.3 验证试验 | 第55页 |
| 本章小结 | 第55-57页 |
| 第三章 转化茯苓及其水溶性多糖的研究 | 第57-81页 |
| 1 材料与方法 | 第58-65页 |
| 1.1 材料、试剂与仪器设备 | 第58-59页 |
| 1.1.1 材料 | 第58-59页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第59页 |
| 1.1.3 主要设备 | 第59页 |
| 1.2 试验方法 | 第59-65页 |
| 1.2.1 转化茯苓的研究 | 第59-60页 |
| 1.2.1.1 微观结构研究 | 第59-60页 |
| 1.2.1.2 红外吸收光谱研究 | 第60页 |
| 1.2.2 转化茯苓水溶性多糖紫外光谱研究 | 第60页 |
| 1.2.3 转化茯苓水溶性多糖理化性质鉴定 | 第60页 |
| 1.2.4 转化茯苓水溶性多糖抑菌功能研究 | 第60-61页 |
| 1.2.4.1 对金黄色葡萄球菌抑菌作用研究 | 第60-61页 |
| 1.2.4.2 对大肠杆菌抑菌作用研究 | 第61页 |
| 1.2.4.3 对枯草芽孢杆菌抑菌作用研究 | 第61页 |
| 1.2.5 转化茯苓水溶性多糖体外抗氧化功能研究 | 第61-63页 |
| 1.2.5.1 清除超氧阴离子自由基研究 | 第61-62页 |
| 1.2.5.2 清除DPPH自由基研究 | 第62页 |
| 1.2.5.3 清除ABTS自由基研究 | 第62-63页 |
| 1.2.5.4 清除羟基自由基研究 | 第63页 |
| 1.2.6 转化茯苓水溶性多糖对小鼠免疫调节功能研究 | 第63-65页 |
| 1.2.6.1 环磷酰胺致小鼠免疫低下模型构建 | 第63-64页 |
| 1.2.6.2 小鼠脾脏和胸腺指数影响研究 | 第64页 |
| 1.2.6.3 小鼠耳肿胀率影响研究 | 第64页 |
| 1.2.6.4 小鼠血清溶血素水平影响研究 | 第64-65页 |
| 1.2.6.5 小鼠IgG、IgM含量影响研究 | 第65页 |
| 1.2.6.6 小鼠单核-巨噬细胞吞噬率影响研究 | 第65页 |
| 2 结果与分析 | 第65-79页 |
| 2.1 转化茯苓的研究 | 第65-67页 |
| 2.1.1 微观结构变化 | 第65-66页 |
| 2.1.2 红外吸收光谱分析 | 第66-67页 |
| 2.2 转化茯苓水溶性多糖的研究 | 第67-79页 |
| 2.2.1 紫外吸收光谱分析 | 第67-68页 |
| 2.2.2 理化性质鉴定 | 第68页 |
| 2.2.3 抑菌功能研究 | 第68-70页 |
| 2.2.3.1 对金黄色葡萄球菌抑菌作用 | 第68-69页 |
| 2.2.3.2 对大肠杆菌抑菌作用 | 第69页 |
| 2.2.3.3 对枯草芽孢杆菌抑菌作用 | 第69-70页 |
| 2.2.4 体外抗氧化功能研究 | 第70-74页 |
| 2.2.4.1 清除超氧阴离子自由基 | 第70-71页 |
| 2.2.4.2 清除DPPH自由基 | 第71-72页 |
| 2.2.4.3 清除ABTS自由基 | 第72-73页 |
| 2.2.4.4 清除羟基自由基 | 第73-74页 |
| 2.2.5 小鼠免疫调节功能研究 | 第74-79页 |
| 2.2.5.1 小鼠脾脏和胸腺指数影响研究 | 第74-76页 |
| 2.2.5.2 小鼠耳肿胀率影响研究 | 第76-77页 |
| 2.2.5.3 小鼠血清溶血素水平影响研究 | 第77页 |
| 2.2.5.4 小鼠IgG、IgM含量影响研究 | 第77-78页 |
| 2.2.5.5 小鼠单核-巨噬细胞吞噬率影响 | 第78-79页 |
| 3 本章小结 | 第79-81页 |
| 第四章 结论与展望 | 第81-84页 |
| 4.1 主要结论 | 第81-83页 |
| 4.2 展望 | 第83-84页 |
| 致谢 | 第84-85页 |
| 参考文献 | 第85-89页 |