| 中文摘要 | 第3-8页 |
| 英文摘要 | 第8-14页 |
| 中英文缩略词表 | 第15-24页 |
| 第一章 前言 | 第24-30页 |
| 第一节 缺血性神经损伤的治疗研究现状 | 第24-26页 |
| 一、缺血性神经损伤概述 | 第24页 |
| 二、缺血性神经损伤的治疗策略 | 第24-26页 |
| 第二节 神经干细胞增殖的Wnt/β-atenin信号通路 | 第26-29页 |
| 一、Wnt/β-catenin信号通路的组成及功能概述 | 第27-28页 |
| 二、Wnt/β-catenin信号通路对NSCs增殖的调控作用 | 第28-29页 |
| 第三节 复方鹧鸪口服液的现代研究 | 第29-30页 |
| 第二章 复方鹧鸪口服液的制备及澄清工艺研究 | 第30-43页 |
| 第一节 实验条件 | 第30-31页 |
| 一、实验仪器 | 第30-31页 |
| 二、实验药品与试剂 | 第31页 |
| 第二节 实验方法 | 第31-35页 |
| 一、提取工艺研究 | 第31页 |
| 二、澄清工艺研究 | 第31-35页 |
| 第三节 实验结果 | 第35-42页 |
| 一、提取工艺研究 | 第35-37页 |
| 二、澄清工艺研究 | 第37-42页 |
| 第四节 总结与讨论 | 第42-43页 |
| 第三章 复方鹧鸪口服液的质量控制标准研究 | 第43-53页 |
| 第一节 研究条件 | 第43-44页 |
| 一、实验设备 | 第43-44页 |
| 二、药品与试剂 | 第44页 |
| 第二节 方法与结果 | 第44-52页 |
| 一、复方鹧鸪口服液HPLC指纹图谱的建立 | 第44-45页 |
| 二、有效成分的含量测定 | 第45-52页 |
| 第三节 总结与讨论 | 第52-53页 |
| 第四章 在整体水平研究复方鹧鸪口服液抗缺血性神经损伤的作用 | 第53-70页 |
| 第一节 实验材料 | 第53-55页 |
| 一、实验动物 | 第53页 |
| 二、药品与试剂 | 第53-54页 |
| 三、主要仪器设备 | 第54-55页 |
| 四、溶液的配制 | 第55页 |
| 第二节 实验方法 | 第55-60页 |
| 一、KM小鼠脑缺血再灌注动物模型的建立 | 第55-56页 |
| 二、分组和给药 | 第56页 |
| 三、行为学研究方法 | 第56-58页 |
| 四、脑组织病理学研究方法 | 第58-59页 |
| 五、免疫组织化学技术检测Nestin蛋白的含量 | 第59-60页 |
| 第三节 实验结果 | 第60-68页 |
| 一、复方鹧鸪口服液对小鼠行为学功能的影响 | 第60-64页 |
| 二、复方鹧鸪口服液对脑缺血再灌注小鼠脑组织病理形态的影响 | 第64-66页 |
| 三、复方鹧鸪口服液对缺血性神经损伤小鼠脑组织Nestin蛋白含量的影响 | 第66-68页 |
| 第四节 总结与讨论 | 第68-70页 |
| 第五章 细胞水平研究复方鹧鸪口服液促进NSCs增殖的作用机制 | 第70-84页 |
| 第一节 实验材料 | 第70-73页 |
| 一、材料与试剂 | 第70-72页 |
| 二、实验设备与器材 | 第72-73页 |
| 第二节 实验方法 | 第73-78页 |
| 一、C17.2神经干细胞的培养 | 第73页 |
| 二、C17.2神经干细胞鉴定 | 第73-74页 |
| 三、利用C17.2神经干细胞复制氧糖剥夺复供(OGD/R)模型 | 第74-75页 |
| 四、分组和给药 | 第75页 |
| 五、CCK-8法检测C17.2神经干细胞的增殖能力 | 第75-76页 |
| 六、Western Blot技术检测Wnt/β-catenin信号通路中关键靶蛋白的含量变化 | 第76-78页 |
| 第三节 实验结果 | 第78-82页 |
| 一、C17.2神经干细胞的形态学观察与鉴定结果 | 第78-79页 |
| 二、复方鹧鸪口服液对OGD/R损伤的保护作用研究 | 第79-80页 |
| 三、C17.2细胞活力测定 | 第80-81页 |
| 四、Western Blot技术检测Wnt/β-catenin信号通路中靶蛋白的表达变化 | 第81-82页 |
| 第四节 总结与讨论 | 第82-84页 |
| 全文总结 | 第84-85页 |
| 参考文献 | 第85-90页 |
| 致谢 | 第90-91页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第91页 |
