| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 缩略词表 | 第11-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-29页 |
| 前言 | 第13页 |
| 1.1 国内外研究现状 | 第13-24页 |
| 1.1.1 猪流行性腹泻病毒概述 | 第13-18页 |
| 1.1.2 囊膜病毒膜融合的分子机制研究 | 第18-20页 |
| 1.1.3 冠状病毒受体识别机制的研究 | 第20-24页 |
| 1.2 研究目的和意义 | 第24-25页 |
| 1.3 研究内容与方法 | 第25-29页 |
| 1.3.1 仔猪病毒性腹泻病原学调查 | 第25页 |
| 1.3.2 PEDV流行株分离鉴定及致病性研究 | 第25-26页 |
| 1.3.3 PEDV流行株基因组分析 | 第26-27页 |
| 1.3.4 PEDV抗病毒多肽研究 | 第27-28页 |
| 1.3.5 C型凝集素DC-SIGN及L-SIGN在PEDV侵染细胞中的作用 | 第28-29页 |
| 第二章 仔猪病毒性腹泻病原学调查 | 第29-40页 |
| 2.1 前言 | 第29页 |
| 2.2 材料与方法 | 第29-34页 |
| 2.3 结果 | 第34-38页 |
| 2.3.1 仔猪腹泻病毒的调查研究结果 | 第34-37页 |
| 2.3.2 PEDV S1基因扩增序列的比对 | 第37-38页 |
| 2.4 讨论 | 第38-39页 |
| 2.5 小结 | 第39-40页 |
| 第三章 PEDV流行株分离鉴定及致病性研究 | 第40-53页 |
| 3.1 前言 | 第40-41页 |
| 3.2 材料与方法 | 第41-46页 |
| 3.3 结果 | 第46-51页 |
| 3.3.1 PEDV的分离鉴定 | 第46-47页 |
| 3.3.2 PEDV SDSX16 IFA鉴定结果 | 第47页 |
| 3.3.3 PEDV SDSX16病毒传代、滴度及生长曲线的检测 | 第47-48页 |
| 3.3.4 PEDV SDSX16透视电镜直接观察 | 第48-49页 |
| 3.3.5 临床症状 | 第49-50页 |
| 3.3.6 粪便中病毒的检测 | 第50页 |
| 3.3.7 血清中PEDV抗体检测 | 第50-51页 |
| 3.3.8 临床剖检及组织病理学变化 | 第51页 |
| 3.4 讨论 | 第51-52页 |
| 3.5 小结 | 第52-53页 |
| 第四章 PEDV流行株基因组分析 | 第53-64页 |
| 4.1 前言 | 第53页 |
| 4.2 材料与方法 | 第53-59页 |
| 4.3 结果及分析 | 第59-63页 |
| 4.3.1 SDSX16全基因组结构分析 | 第59页 |
| 4.3.2 SDSX16各个基因遗传及变异分析 | 第59-63页 |
| 4.4 讨论 | 第63页 |
| 4.5 小结 | 第63-64页 |
| 第五章 PEDV抗病毒多肽研究 | 第64-80页 |
| 5.1 前言 | 第64-65页 |
| 5.2 材料与方法 | 第65-70页 |
| 5.3 结果及分析 | 第70-76页 |
| 5.3.1 PEDV HR多肽分析结果 | 第70-72页 |
| 5.3.2 PEDV HR重组蛋白的鉴定 | 第72页 |
| 5.3.3 6条多肽在Huh7细胞上的毒性测定 | 第72-73页 |
| 5.3.4 PEDV HR多肽体外抗病毒结果 | 第73-75页 |
| 5.3.5 中和试验 | 第75-76页 |
| 5.4 讨论 | 第76-79页 |
| 5.5 小结 | 第79-80页 |
| 第六章 C型凝集素DC-SIGN及L-SIGN在PEDV侵染细胞中的作用 | 第80-92页 |
| 6.1 前言 | 第80-81页 |
| 6.2 材料与方法 | 第81-85页 |
| 6.3 结果 | 第85-90页 |
| 6.3.1 重组质粒的鉴定 | 第85页 |
| 6.3.2 PEDV-GFP感染表达hDC-SIGN和hL-SIGN的细胞 | 第85-86页 |
| 6.3.3 hDC-SIGN和hL-SIGN的细胞系筛选 | 第86-87页 |
| 6.3.4 PEDV-GFP感染稳定细胞系结果 | 第87-89页 |
| 6.3.5 不同处理方式对PEDV-GFP感染的影响 | 第89-90页 |
| 6.4 讨论 | 第90-91页 |
| 6.5 小结 | 第91-92页 |
| 第七章 结论和创新点 | 第92-93页 |
| 参考文献 | 第93-107页 |
| 致谢 | 第107-109页 |
| 个人简介 | 第109页 |
