摘要 | 第3-4页 |
Abstract | 第4页 |
主要缩略词 | 第5-8页 |
第一章 文献综述 | 第8-32页 |
1.1 哺乳动物卵母细胞减数分裂成熟过程中MPF活性的调控 | 第8-17页 |
1.1.1 简介 | 第8-10页 |
1.1.2 第一次减数分裂前期阻滞的机制 | 第10页 |
1.1.3 第一次减数分裂前期阻滞与重新进入减数分裂过程中MPF活性的调控 | 第10-15页 |
1.1.4 关于蛋白磷酸酶的平衡 | 第15-16页 |
1.1.5 减数分裂功能缺失的卵母细胞第一次减数分裂前期的阻滞 | 第16-17页 |
1.1.6 总结 | 第17页 |
1.2 mRNAs的可变多聚腺苷酸化:3'非翻译区在基因表达中的作用 | 第17-22页 |
1.2.1 多聚腺苷酸化 | 第17-18页 |
1.2.2 可变多聚腺苷酸化 | 第18-19页 |
1.2.3 不同生物学进程中的UTR-APA现象 | 第19页 |
1.2.4 UTR-APA的生理学功能 | 第19-20页 |
1.2.5 UTR-APA的机制 | 第20-21页 |
1.2.6 UTR-APA机制与生理功能研究的最新进展 | 第21-22页 |
1.2.7 总结 | 第22页 |
1.3 CPEB:调控翻译 | 第22-30页 |
1.3.1 翻译调控的范例:从发育到神经突触可塑性,再到细胞衰老 | 第23-25页 |
1.3.2 CPEB结合蛋白 | 第25-26页 |
1.3.3 CPEB调控卵母细胞发生 | 第26页 |
1.3.4 CPEB调控细胞分裂与细胞衰老 | 第26-28页 |
1.3.5 CPEB调控神经突触可塑性、学习和记忆 | 第28-29页 |
1.3.6 大脑中CPEB样蛋白家族 | 第29-30页 |
1.4 本课题的研究目的和意义 | 第30-32页 |
第二章 材料与方法 | 第32-49页 |
2.1 实验动物 | 第32页 |
2.2 主要仪器与器材 | 第32-33页 |
2.3 实验方法(包含所用试剂信息与相关培养基/溶液配制) | 第33-49页 |
2.3.1 小鼠卵母细胞分离与体外培养 | 第33-34页 |
2.3.2 小鼠卵母细胞显微注射 | 第34页 |
2.3.3 小鼠卵母细胞样品收集 | 第34-35页 |
2.3.4 小鼠卵母细胞RNA提取 | 第35页 |
2.3.5 小鼠卵母细胞RNA反转录制备cDNA | 第35-36页 |
2.3.6 RiboTag转基因小鼠基因型鉴定 | 第36-37页 |
2.3.7 RiboTag IP | 第37-39页 |
2.3.8 RNAseq | 第39页 |
2.3.9 Anchored PCR | 第39-41页 |
2.3.10 载体构建与位点突变 | 第41-42页 |
2.3.11 RNA体外转录与纯化 | 第42-43页 |
2.3.12 Luciferase荧光素酶活性检测 | 第43-44页 |
2.3.13 Western blot | 第44-47页 |
2.3.14 qPCR | 第47-48页 |
2.3.15 数据统计分析 | 第48-49页 |
第三章 实验结果 | 第49-68页 |
3.1 小鼠卵母细胞成熟过程中募集到核糖体的Ccnb1 3'UTR分析 | 第49-54页 |
3.2 小鼠卵母细胞中存在3种3'UTR长度不同的Ccnb1 mRNAs | 第54-56页 |
3.3 减数分裂进程中不同3'UTR所调控的差异性翻译 | 第56-59页 |
3.4 小鼠卵母细胞内源三种Ccnb1 mRNAs的翻译存在差异 | 第59-62页 |
3.5 顺式作用元件CPE对Ccnb1 mRNA翻译的影响 | 第62-65页 |
3.6 卵母细胞中mRNA可变多聚腺苷酸化的全局性分析 | 第65-66页 |
3.7 小鼠有丝分裂细胞中也存在3种Ccnb1 mRNAs | 第66-68页 |
第四章 讨论 | 第68-71页 |
4.1 小鼠卵母细胞中存在三种3'UTR不同的Ccnb1 mRNAs | 第68-69页 |
4.2 含有不同3'UTR的Ccnb1 mRNAs对于蛋白合成时间的调控 | 第69页 |
4.3 小鼠母源mRNA普遍存在可变多聚腺苷酸化 | 第69-71页 |
第五章 结论与展望 | 第71-72页 |
5.1 结论 | 第71页 |
5.2 展望 | 第71-72页 |
参考文献 | 第72-88页 |
附录 | 第88-92页 |
致谢 | 第92-93页 |
个人简历 | 第93-94页 |
博士期间已发表论文 | 第94页 |