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丹参幼根小RNA的鉴定及小RNA通路关键酶基因家族的系统分析

中文摘要第8-10页
Abstract第10-11页
第一章 文献综述第12-32页
    1 植物小RNA的研究进展第12-22页
        1.1 miRNA的研究进展第12-19页
            1.1.1 miRNA的发现及概念第12-13页
            1.1.2 miRNA的产生机制第13页
            1.1.3 miRNA基因的起源与进化第13-15页
            1.1.4 miRNA的生理功能第15-19页
        1.2 siRNA的研究进展第19-22页
            1.2.1 ta-siRNA第19-21页
            1.2.2 nat-siRNA第21-22页
            1.2.3 hc-siRNA第22页
    2 小RNA产生和作用途径关键蛋白的研究进展第22-28页
        2.1 植物DCL的研究进展第22-25页
            2.1.1 DCL的种类和结构第22-23页
            2.1.2 DCL的功能第23-25页
        2.2 植物AGO的研究进展第25-26页
            2.2.1 AGO的种类与结构第25页
            2.2.2 AGO的功能第25-26页
        2.3 植物RDR的研究进展第26-28页
            2.3.1 RDR的种类与结构第26-27页
            2.3.2 RDR的功能第27-28页
    3 丹参的研究进展第28-31页
        3.1 丹参的主要化学成分和药理作用第28-29页
        3.2 丹参有效成分代谢途径的研究进展第29-31页
    4 本研究的目的和意义第31-32页
第二章 丹参幼根小RNA的鉴定第32-54页
    1 实验材料第32页
    2 实验方法第32-33页
        2.1 丹参幼根不同发育时期的总RNA的提取第32页
        2.2 DNase I消化总RNA第32-33页
        2.3 丹参小RNA文库制备第33页
        2.4 降解组文库的建立第33页
    3 结果第33-52页
        3.1 RNA提取及检测第34页
        3.2 小RNA测序结果的初步分析第34-35页
        3.3 丹参幼根小RNA的碱基偏好性第35-36页
        3.4 丹参幼根miRNA的确定第36-46页
            3.4.1 丹参幼根保守miRNA的确定第36-38页
            3.4.2 丹参幼根保守miRNA靶基因的预测与靶基因降解组验证第38-46页
        3.5 丹参幼根新miRNA的确定第46-48页
        3.6 丹参幼根phased siRNA的确定第48-50页
        3.7 丹参幼根差异表达的miRNA第50-52页
    4 讨论第52-54页
第三章 丹参小RNA通路关键酶基因家族的克隆与分析第54-92页
    1 实验材料第54-60页
        1.1 植物材料第54页
        1.2 植物材料的胁迫处理第54页
        1.3 菌株与载体第54页
        1.4 酶与各种生化试剂第54页
        1.5 实验所用引物的设计与合成第54-60页
    2 实验方法第60-67页
        2.1 丹参DCL、AGO和RDR基因的预测第60页
        2.2 植物总RNA的提取第60-61页
        2.3 mRNA的分离纯化第61页
        2.4 5'cDNA库的制备第61-63页
            2.4.1 RNA去磷酸化第61页
            2.4.2 沉淀RNA第61-62页
            2.4.3 RNA去帽子结构第62页
            2.4.4 去帽的mRNA加接头第62页
            2.4.5 反转录mRNA第62-63页
        2.5 3'cDNA库的制备第63页
        2.6 丹参DCL、AGO和RDR基因的克隆第63-65页
            2.6.1 5'RACE和3'RACE实验第63-64页
            2.6.2 PCR产物琼脂糖凝胶回收第64页
            2.6.3 连接、转化与测序第64-65页
            2.6.4 丹参DCL、AGO和RDR基因中间片段的克隆第65页
        2.7 实时荧光定量PCR第65-66页
        2.8 生物信息学分析及进化树构建第66页
        2.9 丹参DCL、AGO和RDR基因家族成员与植物miRNA的比对第66页
        2.10 5'RACE验证丹参miRNA切割位点第66-67页
    3 结果与分析第67-87页
        3.1 丹参DCL基因家族的鉴定与分析第67-74页
            3.1.1 丹参DCL基因因1家族的鉴定与克隆第67页
            3.1.2 丹参DCL基因家族的生物信息学分析第67-69页
            3.1.3 丹参DCL基因家族的系统进化树分析第69-71页
            3.1.4 丹参DCL基因家族的组织特异性表达分析第71页
            3.1.5 丹参DCL基因家族成员转录后受miRNA调控分析第71-74页
        3.2 丹参AGO基因家族的鉴定与分析第74-81页
            3.2.1 丹参AGO基因家族的鉴定与克隆第74页
            3.2.2 丹参AGO基因家族的生物信息学分析第74-79页
            3.2.3 丹参AGO基因家族的系统进化树分析第79-80页
            3.2.4 丹参AGO基因家族的组织特异性表达分析第80页
            3.2.5 丹参AGO基因家族成员转录后受miRNA调控分析第80-81页
        3.3 丹参RDR基因家族的鉴定与分析第81-87页
            3.3.1 丹参RDR基因家族的鉴定第81页
            3.3.2 丹参RDR基因家族的生物信息学分析第81-83页
            3.3.3 丹参RDR基因家族的系统进化树分析第83-84页
            3.3.4 丹参RDR基因家族的组织特异性表达分析第84页
            3.3.5 丹参RDR基因家族对胁迫的响应第84-87页
    4 讨论第87-92页
        4.1 丹参DCL基因家族第87-88页
            4.1.1 丹参DCL基因的鉴定第87页
            4.1.2 植物miR162靶位点的演化第87页
            4.1.3 miR162的进化第87-88页
        4.2 丹参AGO基因家族第88-89页
            4.2.1 丹参AGO基因家族的鉴定第88页
            4.2.2 拟南芥和丹参AGO的保守性和多样性第88-89页
            4.2.3 丹参AGO基因的转录后调控第89页
        4.3 丹参RDR基因家族第89-92页
            4.3.1 丹参RDR基因家族的鉴定第89-90页
            4.3.2 丹参RDR基因家族的功能第90-92页
第四章 RNAi载体构建及遗传转化体系的建立第92-102页
    1 实验材料第92页
        1.1 菌株与载体第92页
        1.2 酶与各种生化试剂第92页
    2 实验方法第92-96页
        2.1 克隆丹参DCL1和DCL2的正反向片段第92页
        2.2 RNAi载体构建详细步骤第92-93页
        2.3 PBI121质粒的提取第93页
        2.4 酶切反应第93-94页
        2.5 切胶回收第94页
        2.6 连接反应体系第94页
        2.7 转化大肠杆菌感受态细胞,PCR验证,酶切验证第94页
        2.8 农杆菌转化感受态细胞的制备第94-95页
        2.9 农杆菌转化方法第95页
        2.10 丹参遗传转化体系的建立第95-96页
    3 结果与分析第96-101页
        3.1 RNAi载体构建第96-100页
            3.1.1 DCL1和DCL2基因的正反向片段的克隆第96页
            3.1.2 插入DCL1和¨DCL2基因的正向片段到PUC19GUS第96-97页
            3.1.3 插入DCL1和DCL2基因的反向片段到PUC19GUS第97-98页
            3.1.4 PUCDCL1与 PUCDCL2的酶切与PB1121的连接第98页
            3.1.5 PBIDCL1和 PBIDCL2的酶切验证第98页
            3.1.6 pGPTV-HPTDCL1和pGPTV-HPTDCL2的构建第98-99页
            3.1.7 pGPTV-HPTDCL1和pGPTV-HPTDCL2转化农杆菌的PCR验证第99-100页
        3.2 遗传转化体系的建立第100-101页
    4 讨论第101-102页
        4.1 RNAi载体构建第101页
        4.2 遗传转化的影响因素第101-102页
            4.2.1 抗生素对转化的影响第101页
            4.2.2 农杆菌对转化的影响第101页
            4.2.3 外植体的生长时期对转化的影响第101-102页
第五章 结论与展望第102-104页
参考文献第104-124页
致谢第124-125页
作者简介第125页

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