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Bacillus amyloliquefaciens M1菌株生产的抗菌脂肽对耐药性海洋病原弧菌抑菌活性的研究

摘要第5-7页
Abstract第7-8页
第一章 绪论第13-27页
    1.1 前言第13-14页
    1.2 抗菌脂肽的研究进展第14页
    1.3 抗菌脂肽的种类、结构及功能第14-19页
        1.3.1 表面活性素第14-17页
        1.3.2 芬荠素第17-18页
        1.3.3 伊枯草菌素家族第18-19页
    1.4 抗菌脂肽的发酵生产第19-21页
        1.4.1 碳源和氮源的影响第19-20页
        1.4.2 离子浓度的影响第20页
        1.4.3 发酵条件的影响第20页
        1.4.4 固体发酵生产抗菌脂肽第20-21页
    1.5 抗菌脂肽的提取与纯化第21-22页
        1.5.1 抗菌脂肽的提取第21页
        1.5.2 抗菌脂肽的纯化第21-22页
    1.6 抗菌脂肽的应用及发展前景第22-25页
        1.6.1 抗菌脂肽在农业中的应用第22-23页
        1.6.2 抗菌脂肽在畜牧业中的应用第23页
        1.6.3 抗菌脂肽在医学领域中的应用第23-24页
        1.6.4 抗菌脂肽在食品行业中的应用第24页
        1.6.5 抗菌脂肽在环境保护方面的应用第24-25页
    1.7 本研究的目的及意义第25页
    1.8 本论文的研究内容第25-27页
第二章 产抑菌活性物质的 M1 菌株的鉴定第27-40页
    2.1 前言第27页
    2.2 实验材料第27-28页
        2.2.1 菌株第27-28页
        2.2.2 培养基第28页
    2.3 实验方法第28-32页
        2.3.1 M1 菌株抑菌活性的检测第28页
        2.3.2 M1 菌株的常规方法鉴定第28-29页
        2.3.3 分子生物学鉴定第29-31页
        2.3.4 M1 菌株的杀菌谱测定第31页
        2.3.5 海洋病原弧菌耐药性的测定第31-32页
    2.4 结果与讨论第32-39页
        2.4.1 M1 菌株的常规方法鉴定结果第32-35页
        2.4.2 M1 菌株分子生物学鉴定结果第35页
        2.4.3 海洋病原弧菌耐药性的测定第35-37页
        2.4.4 M1 菌株的抑菌范围第37-39页
    2.5 本章小结第39-40页
第三章 M1 菌株产抑菌物质发酵条件的优化及发酵试验第40-53页
    3.1 前言第40页
    3.2 实验材料第40-42页
        3.2.1 菌株第40-41页
        3.2.2 培养基和试剂第41-42页
    3.3 实验方法第42-45页
        3.3.1 M1 菌株发酵条件的优化第42-43页
        3.3.2 M1 菌株的发酵实验第43-45页
    3.4 结果与讨论第45-51页
        3.4.1 培养基豆饼粉浓度的优化结果第45页
        3.4.2 培养基碳源种类的优化结果第45-46页
        3.4.3 培养基碳源浓度的优化结果第46-47页
        3.4.4 培养基 pH 的优化结果第47-48页
        3.4.5 发酵温度的优化结果第48-49页
        3.4.6 M1 菌株的摇瓶发酵实验结果第49-50页
        3.4.7 M1 菌株的 10-L 发酵罐发酵实验结果第50-51页
    3.5 本章小结第51-53页
第四章 抑菌物质的分离纯化第53-65页
    4.1 前言第53页
    4.2 实验材料第53页
        4.2.1 菌株第53页
        4.2.2 培养基第53页
        4.2.3 试剂第53页
    4.3 实验方法第53-56页
        4.3.1 盐酸沉淀法对 M1 菌株抑菌物质进行粗提第53-54页
        4.3.2 抑菌活性物质的薄层层析分析第54页
        4.3.3 利用高压液相色谱对抑菌物质进行进一步的分离第54-55页
        4.3.4 对纯化后抑菌物质进行质谱分析第55页
        4.3.5 纯化后抑菌物质的最适作用温度和温度稳定性第55页
        4.3.6 纯化后抑菌物质的 pH 值稳定性第55页
        4.3.7 纯化后抑菌物质的杀菌谱第55页
        4.3.8 纯化后抑菌物质的最小抑菌浓度的测定第55-56页
    4.4 结果与讨论第56-64页
        4.4.1 盐酸沉淀法对 M1 菌株抑菌物质的粗提结果第56页
        4.4.2 抑菌活性物质的薄层层析分析第56-57页
        4.4.3 高压液相色谱对抑菌物质进行进一步的分离第57-58页
        4.4.4 纯化后抑菌物质的质谱分析第58-60页
        4.4.5 纯化后抑菌物质的最适作用温度和温度稳定性第60-61页
        4.4.6 纯化后抑菌物质的 pH 值稳定性第61-62页
        4.4.7 纯化后抑菌物质的杀菌谱第62-63页
        4.4.8 纯化后抑菌物质的最小抑菌浓度的测定第63-64页
    4.5 本章小结第64-65页
第五章 M1 菌株抗菌脂肽抑菌机理的初步研究第65-72页
    5.1 前言第65页
    5.2 实验材料第65-66页
        5.2.1 菌株第65页
        5.2.2 培养基第65页
        5.2.3 试剂第65-66页
        5.2.4 仪器第66页
    5.3 实验方法第66-67页
        5.3.1 抗菌脂肽对鳗弧菌细胞原生质体的抑菌活性第66页
        5.3.2 电镜检测抗菌脂肽作用后的敏感鳗弧菌细胞第66页
        5.3.3 荧光检测抗菌脂肽作用后的敏感鳗弧菌细胞第66-67页
    5.4 结果与讨论第67-70页
        5.4.1 抗菌脂肽对鳗弧菌细胞原生质体的抑菌活性第67-68页
        5.4.2 电镜检测抗菌脂肽作用后的敏感鳗弧菌细胞第68-69页
        5.4.3 荧光检测抗菌脂肽作用后的敏感鳗弧菌细胞第69-70页
    5.5 本章小结第70-72页
论文的总结与创新点第72-74页
参考文献第74-83页
附录:英文缩写符号及其中英文名称第83-85页
致谢第85-86页
个人简历第86-87页
硕士期间发表的学术论文第87-88页

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