| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 缩写词对照表 | 第12-13页 |
| 引言 | 第13-15页 |
| 第一部分 FNC 在 Beagle 犬体内的血浆动力学 | 第15-41页 |
| 第一节 Beagle 犬血浆样品中 FNC 定量分析方法的建立与验证 | 第15-32页 |
| 1 实验材料和仪器 | 第16-17页 |
| 1.1 主要仪器与设备 | 第16页 |
| 1.2 实验药品与试剂 | 第16页 |
| 1.3 生物样品来源 | 第16-17页 |
| 2 实验方法 | 第17-24页 |
| 2.1 样品前处理 | 第17页 |
| 2.2 分析条件 | 第17-19页 |
| 2.3 方法学考察 | 第19-24页 |
| 2.4 未知样品的测定 | 第24页 |
| 3 实验结果 | 第24-30页 |
| 3.1 标准曲线的线性和范围及定量限（LLOQ）的确定 | 第24-25页 |
| 3.2 分析方法基质效应 | 第25页 |
| 3.3 分析方法专属性 | 第25-26页 |
| 3.4 分析方法准确度与精密度 | 第26-27页 |
| 3.5 分析方法提取回收率 | 第27-28页 |
| 3.6 稳定性考察 | 第28-29页 |
| 3.7 未知样品的测定 | 第29-30页 |
| 4 讨论 | 第30-31页 |
| 4.1 质谱检测条件的优化 | 第30页 |
| 4.2 色谱分离条件的选择 | 第30页 |
| 4.3 生物样品处理方法的优化 | 第30-31页 |
| 4.4 内标化合物的选择 | 第31页 |
| 5 小结 | 第31-32页 |
| 第二节 FNC 在 Beagle 犬体内血浆药代动力学研究 | 第32-41页 |
| 1 实验材料 | 第32-33页 |
| 1.1 受试动物 | 第32页 |
| 1.2 药品与试剂 | 第32-33页 |
| 2 实验方法 | 第33-35页 |
| 2.1 分析条件 | 第33页 |
| 2.2 实验设计与样品采集 | 第33-34页 |
| 2.3 犬血浆样品测定 | 第34页 |
| 2.4 数据分析 | 第34-35页 |
| 3 实验结果 | 第35-40页 |
| 3.1 犬单次经口灌胃给药血浆药代动力学 | 第35-40页 |
| 4 讨论 | 第40页 |
| 5 小结 | 第40-41页 |
| 第二部分 FNC 的大鼠组织分布研究 | 第41-58页 |
| 1 实验材料和仪器 | 第41-42页 |
| 1.1 主要仪器与设备 | 第41页 |
| 1.2 实验药品与试剂 | 第41-42页 |
| 1.3 受试动物 | 第42页 |
| 2 实验方法 | 第42-47页 |
| 2.1 组织中 FNC 分析方法的建立与验证 | 第42-46页 |
| 2.1.1 组织器官匀浆液的制备与样品前处理 | 第42-43页 |
| 2.1.2 分析条件 | 第43页 |
| 2.1.3 主要试液的配制 | 第43-44页 |
| 2.1.4 方法学考察 | 第44-46页 |
| 2.1.5 未知样品的测定 | 第46页 |
| 2.2 FNC 在大鼠的组织分布 | 第46-47页 |
| 2.2.1 动物实验设计与组织样品的采集 | 第46-47页 |
| 2.2.2 大鼠组织样品的测定 | 第47页 |
| 3 实验结果 | 第47-56页 |
| 3.1 方法学验证结果 | 第47-54页 |
| 3.1.1 专属性考察 | 第47-48页 |
| 3.1.2 基质效应考察 | 第48-49页 |
| 3.1.3 生物样品中 FNC 标准曲线的制备及定量限（LLOQ） | 第49-51页 |
| 3.1.4 精密度和准确度考察 | 第51-52页 |
| 3.1.5 提取回收率考察 | 第52页 |
| 3.1.6 稳定性考察 | 第52-54页 |
| 3.2 未知样品测定 | 第54页 |
| 3.3 SD 大鼠经口灌胃 FNC 的组织分布 | 第54-56页 |
| 4 讨论 | 第56-57页 |
| 5 小结 | 第57-58页 |
| 全文总结 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-63页 |
| 综述 | 第63-78页 |
| 参考文献 | 第74-78页 |
| 个人简历 | 第78-79页 |
| 致谢 | 第79页 |
