| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 前言 | 第13-14页 |
| 第一章 绪论 | 第14-18页 |
| 1 白蛋白纳米粒给药系统作用特点 | 第14-16页 |
| 1.1 具有高度靶向性 | 第14-15页 |
| 1.2 增加难溶性药物的溶解度 | 第15页 |
| 1.3 提髙药物疗效和降低毒副作用 | 第15页 |
| 1.4 具有缓控释功能 | 第15-16页 |
| 2 白蛋白纳米粒制备方法 | 第16-17页 |
| 2.1 去溶剂化法 | 第16页 |
| 2.2 乳化固化法 | 第16页 |
| 2.3 快速膨胀超临界溶液法 | 第16-17页 |
| 2.4 基于二硫键形成法的 nab~(TM)-技术 | 第17页 |
| 2.5 其他方法 | 第17页 |
| 3 白蛋白纳米粒的应用前景 | 第17-18页 |
| 第二章 JD27 白蛋白纳米粒制备工艺的研究 | 第18-32页 |
| 1 仪器与试剂 | 第18-19页 |
| 1.1 仪器 | 第18-19页 |
| 1.2 试剂 | 第19页 |
| 2 实验方法 | 第19-22页 |
| 2.1 JD27 白蛋白纳米粒含量测定方法的建立 | 第19-20页 |
| 2.2 白蛋白纳米粒包封率和载药量的测定 | 第20页 |
| 2.3 JD27 白蛋白纳米粒粒径的测定 | 第20-21页 |
| 2.4 JD27 白蛋白纳米粒制备工艺的研究 | 第21-22页 |
| 2.5 三批样品重现性 | 第22页 |
| 3 实验结果 | 第22-30页 |
| 3.1 JD27 白蛋白纳米粒含量测定方法学考察 | 第22-26页 |
| 3.2 处方筛选 | 第26-29页 |
| 3.3 三批样品重现性试验 | 第29-30页 |
| 4 讨论 | 第30页 |
| 5 小结 | 第30-32页 |
| 第三章 JD27 白蛋白纳米粒冻干粉的制备及质量评价 | 第32-41页 |
| 1 仪器与试剂 | 第32-33页 |
| 1.1 仪器 | 第32-33页 |
| 1.2 试剂 | 第33页 |
| 2 实验方法 | 第33-35页 |
| 2.1 JD27 白蛋白纳米粒冻干粉的制备 | 第33页 |
| 2.2 复溶后粒径及 zeta 电位的测定 | 第33-34页 |
| 2.3 扫描电镜（SEM） | 第34页 |
| 2.4 体外释放研究 | 第34页 |
| 2.5 初步稳定性试验 | 第34-35页 |
| 3 实验结果 | 第35-39页 |
| 3.1 JD27 白蛋白纳米粒冻干粉的制备 | 第35-36页 |
| 3.2 复溶后粒径及 zeta 电位的测量 | 第36-37页 |
| 3.3 扫描电镜（SEM） | 第37页 |
| 3.4 体外释药研究 | 第37-38页 |
| 3.5 初步稳定性试验 | 第38-39页 |
| 4 讨论 | 第39页 |
| 5 小结 | 第39-41页 |
| 第四章 JD27 白蛋白纳米粒细胞动力学研究 | 第41-57页 |
| 1 仪器与试剂 | 第41-42页 |
| 1.1 仪器 | 第41-42页 |
| 1.2 试剂 | 第42页 |
| 2 实验方法 | 第42-47页 |
| 2.1 细胞培养 | 第42页 |
| 2.2 MTT 法检测 JD27 及 JD27 白蛋白纳米粒对 EC-9706 细胞的抑制率 | 第42-44页 |
| 2.3 倒置显微镜观察 JD27 白蛋白纳米粒对人食管癌 EC-9706 细胞形态的影响 | 第44页 |
| 2.4 Hoechst 33258 染色实验观察 JD27 对 EC-9706 细胞膜通透性的影响 | 第44页 |
| 2.5 细胞内 JD27 含量测定方法的建立 | 第44-46页 |
| 2.6 细胞动力学研究 | 第46-47页 |
| 3 实验结果 | 第47-55页 |
| 3.1 MTT 法检测 JD27 及 JD27 白蛋白纳米粒对 EC-9706 细胞的抑制率 | 第47-49页 |
| 3.2 倒置显微镜观察 JD27 白蛋白纳米粒对 EC-9706 细胞形态的影响 | 第49页 |
| 3.3 Hoechst 33258 染色实验观察 JD27 对 EC-9706 细胞膜通透性的影响 | 第49-51页 |
| 3.4 细胞内 JD27 含量测定方法的建立 | 第51-54页 |
| 3.5 细胞动力学试验 | 第54-55页 |
| 4 讨论 | 第55-56页 |
| 5 小结 | 第56-57页 |
| 第五章 Western blot检测JD27白蛋白纳米粒对EC-9706细胞周期相关蛋白表达的影响 | 第57-67页 |
| 1 仪器与试剂 | 第57-59页 |
| 1.1 主要仪器 | 第57-58页 |
| 1.2 主要试剂 | 第58页 |
| 1.3 主要溶液的配置 | 第58-59页 |
| 2 实验方法 | 第59-63页 |
| 2.1 实验分组 | 第59-60页 |
| 2.2 蛋白标准曲线的制备 | 第60页 |
| 2.3 总蛋白提取 | 第60页 |
| 2.4 Western blot 步骤 | 第60-63页 |
| 2.5 统计学分析 | 第63页 |
| 3 实验结果 | 第63-65页 |
| 4 讨论 | 第65-66页 |
| 5 小结 | 第66-67页 |
| 第六章 JD27 白蛋白纳米粒对大鼠 S9 中 CYP1A2，CYP2D6，CYP2E1 酶体外活性影响的初步研究 | 第67-76页 |
| 1 仪器与试剂 | 第67-69页 |
| 1.1 主要仪器 | 第67页 |
| 1.2 主要试剂 | 第67-68页 |
| 1.3 主要溶液的配置 | 第68-69页 |
| 1.4 实验动物 | 第69页 |
| 2 实验方法 | 第69-71页 |
| 2.1 S9 的制备 | 第69-70页 |
| 2.2 S9 体外孵育体系 | 第70-71页 |
| 2.3 JD27 白蛋白纳米粒对大鼠 S9 中 CYP1A2，CYP2D6，CYP2E1 酶体外活性的影响 | 第71页 |
| 3 实验结果 | 第71-74页 |
| 3.1 S9 蛋白含量测定 | 第71页 |
| 3.2 S9 活性验证 | 第71-72页 |
| 3.3 JD27 白蛋白纳米粒对大鼠 S9 中 CYP1A2，CYP2D6，CYP2E1 酶体外活性影响 | 第72-74页 |
| 4 讨论 | 第74-75页 |
| 5 结论 | 第75-76页 |
| 全文总结 | 第76-78页 |
| 参考文献 | 第78-83页 |
| 个人简历 | 第83-84页 |
| 致谢 | 第84页 |
