| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 1 绪论 | 第13-21页 |
| 1.1 微生物胞外多糖的研究概况 | 第13-17页 |
| 1.1.1 胞外多糖的提取分离及纯化 | 第13-14页 |
| 1.1.2 胞外多糖的生物活性 | 第14-15页 |
| 1.1.3 胞外多糖的结构分析 | 第15-16页 |
| 1.1.4 胞外多糖的应用 | 第16-17页 |
| 1.2 多糖的降解 | 第17-18页 |
| 1.2.1 物理方法 | 第17页 |
| 1.2.2 化学方法 | 第17-18页 |
| 1.2.3 生物学方法 | 第18页 |
| 1.3 酵母胞外多糖的研究现状 | 第18-19页 |
| 1.4 胶红酵母研究进展 | 第19页 |
| 1.5 论文研究的目的和内容 | 第19-21页 |
| 2 胶红酵母胞外多糖的制备及其体内活性研究 | 第21-39页 |
| 2.1 引言 | 第21页 |
| 2.2 实验材料与设备 | 第21-23页 |
| 2.2.1 培养基与菌种 | 第21页 |
| 2.2.2 实验动物 | 第21-22页 |
| 2.2.3 实验材料与试剂 | 第22页 |
| 2.2.4 仪器与设备 | 第22-23页 |
| 2.3 实验方法 | 第23-25页 |
| 2.3.1 胞外粗多糖的制备 | 第23页 |
| 2.3.2 胞外多糖产量的测定 | 第23页 |
| 2.3.3 胞外多糖化学组分的测定 | 第23-24页 |
| 2.3.4 葡萄糖耐量实验(OGTT) | 第24页 |
| 2.3.5 胞外多糖的镇痛作用 | 第24-25页 |
| 2.3.6 胞外多糖的抗疲劳作用 | 第25页 |
| 2.3.7 数据处理与统计 | 第25页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第25-37页 |
| 2.4.1 胞外多糖的产量 | 第25页 |
| 2.4.2 胞外多糖化学组分的测定 | 第25-27页 |
| 2.4.3 胞外多糖对正常小鼠OGTT的影响 | 第27-29页 |
| 2.4.4 胞外多糖对小鼠的镇痛作用 | 第29-32页 |
| 2.4.5 胞外多糖对小鼠的抗疲劳作用 | 第32-37页 |
| 2.5 小结 | 第37-39页 |
| 3 胶红酵母胞外多糖的初步纯化和抗氧化活性 | 第39-46页 |
| 3.2 实验材料与设备 | 第39-40页 |
| 3.2.1 实验材料与试剂 | 第39-40页 |
| 3.2.2 设备与仪器 | 第40页 |
| 3.3 实验方法 | 第40-41页 |
| 3.3.1 阴离子离子交换柱层析 | 第40页 |
| 3.3.2 胞外多糖还原力的测定 | 第40页 |
| 3.3.3 胞外多糖清除DPPH自由基能力 | 第40-41页 |
| 3.3.4 胞外多糖清除羟自由基(·OH)能力 | 第41页 |
| 3.3.5 胞外多糖清除超氧阴离子(O_2~-·)能力 | 第41页 |
| 3.4 实验结果与讨论 | 第41-45页 |
| 3.4.1 阴离子交换色谱层析 | 第41-42页 |
| 3.4.2 胞外多糖还原力的测定 | 第42页 |
| 3.4.3 胞外多糖清除DPPH自由基能力 | 第42-43页 |
| 3.4.4 胞外多糖清除羟自由基(·OH)能力 | 第43-44页 |
| 3.4.5 胶红酵母胞外多糖清除超氧阴离子(O_2~-·)能力 | 第44-45页 |
| 3.5 小结 | 第45-46页 |
| 4 胶红酵母胞外多糖EPS4-1的结构表征 | 第46-62页 |
| 4.1 引言 | 第46页 |
| 4.2 实验材料与设备 | 第46-47页 |
| 4.2.1 材料与试剂 | 第46-47页 |
| 4.2.2 设备与仪器 | 第47页 |
| 4.3 实验方法 | 第47-50页 |
| 4.3.1 凝胶渗透色谱柱层析 | 第47页 |
| 4.3.2 紫外光谱分析 | 第47页 |
| 4.3.3 红外光谱分析 | 第47-48页 |
| 4.3.4 分子量测定 | 第48页 |
| 4.3.5 单糖组成分析 | 第48页 |
| 4.3.6 核磁共振氢谱及碳谱分析 | 第48页 |
| 4.3.7 高碘酸氧化反应 | 第48-49页 |
| 4.3.8 甲基化反应及GC-MS分析 | 第49-50页 |
| 4.3.9 刚果红实验 | 第50页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第50-61页 |
| 4.4.1 凝胶渗透色谱柱层析 | 第50-51页 |
| 4.4.2 紫外光谱分析 | 第51页 |
| 4.4.3 红外光谱分析 | 第51-52页 |
| 4.4.4 分子量测定 | 第52页 |
| 4.4.5 单糖组成分析 | 第52-54页 |
| 4.4.6 核磁共振氢谱及碳谱分析 | 第54-56页 |
| 4.4.7 高碘酸氧化反应分析 | 第56-57页 |
| 4.4.8 甲基化反应及GC-MS分析 | 第57-60页 |
| 4.4.9 刚果红实验 | 第60-61页 |
| 4.5 小结 | 第61-62页 |
| 5 胞外多糖降解产物的制备、抗氧化活性比较及微观形貌分析 | 第62-76页 |
| 5.1 引言 | 第62页 |
| 5.2 实验材料与设备 | 第62-63页 |
| 5.2.1 实验材料与试剂 | 第62页 |
| 5.2.2 仪器与设备 | 第62-63页 |
| 5.3 实验方法 | 第63-65页 |
| 5.3.1 还原糖相对含量的测定 | 第63页 |
| 5.3.2 多糖EPS4的酸解单因素实验 | 第63-64页 |
| 5.3.3 响应面实验设计 | 第64页 |
| 5.3.4 抗氧化活性的测定 | 第64页 |
| 5.3.5 扫描电镜分析 | 第64页 |
| 5.3.6 原子力显微镜分析 | 第64-65页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第65-74页 |
| 5.4.1 还原糖标准曲线的绘制 | 第65页 |
| 5.4.2 酸解单因素实验 | 第65-68页 |
| 5.4.3 响应面优化实验 | 第68-70页 |
| 5.4.4 多糖EPS4降解的最佳降解条件的结果与分析 | 第70页 |
| 5.4.5 抗氧化活性分析 | 第70-73页 |
| 5.4.6 扫描电镜分析 | 第73页 |
| 5.4.7 原子力显微镜分析 | 第73-74页 |
| 5.5 小结 | 第74-76页 |
| 6 结论、创新点及展望 | 第76-78页 |
| 6.1 结论 | 第76-77页 |
| 6.2 创新点 | 第77页 |
| 6.3 展望 | 第77-78页 |
| 致谢 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-88页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第88-90页 |
