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利用CRISPR/Cas9在Bel-7402细胞中靶向敲除SMYD3基因的初步研究

摘要第6-9页
Abstract第9-12页
常用缩写词中英文对照表第13-14页
前言第14-16页
1 实验材料第16-23页
    1.1 细胞株第16页
    1.2 菌株第16页
    1.3 质粒第16页
    1.4 主要试剂第16-18页
    1.5 实验所需引物第18-19页
    1.6 实验器材第19页
    1.7 主要试剂配制第19-23页
2 实验方法第23-41页
    2.1 质粒准备第23-25页
    2.2 细胞培养第25-26页
    2.3 WesternBlot检测SMYD3蛋白在HEK293T细胞和Bel-7402细胞中的表达第26-28页
    2.4 CRISPR/Cas9打靶载体的构建与验证第28-32页
    2.5 优化脂质体最佳负载量第32页
    2.6 嘌呤霉素对HEK293T细胞和Bel-7402细胞最低致死浓度筛选第32页
    2.7 CRISPR/Cas9打靶活性检测第32-34页
    2.8 Bel-7402细胞SMYD3基因缺陷型单克隆细胞株制备第34-35页
    2.9 WesternBlot法检测SMYD3蛋白在单克隆细胞株的表达第35-38页
    2.10 靶目的DNA片段测序验证第38-40页
    2.11 SMYD3敲除后对细胞功能的影响第40页
    2.12 统计学分析第40-41页
3 结果第41-59页
    3.1 PX459质粒测序结果第41-42页
    3.2 sgRNA设计结果第42页
    3.3 PX459酶切结果第42-43页
    3.4 菌液PCR鉴定阳性sgRNA-PX459重组质粒第43-44页
    3.5 sgRNA-PX459重组质粒测序结果第44-48页
    3.6 细胞培养第48-49页
    3.7 WesternBlot检测SMYD3蛋白在HEK293T细胞和Bel-7402细胞中的表达第49页
    3.8 脂质体转染条件优化第49-51页
    3.9 PCR产物分子量大小验证引物的有效性第51-52页
    3.10 测序验证靶位点PCR引物第52-53页
    3.11 打靶载体活性检测第53-54页
    3.12 WesternBlot检测SMYD3蛋白表达第54-56页
    3.13 筛选SMYD3基因缺陷性Bel-7402细胞株第56-57页
    3.14 cck-8法检测细胞增殖第57-58页
    3.15 划痕实验检测细胞迁移第58-59页
4 讨论第59-62页
5 结论第62-63页
参考文献第63-68页
综述第68-77页
    参考文献第72-77页
致谢第77-78页
在学期间研究成果第78-79页
个人简历第79页

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