| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 英文缩写词表 | 第8-13页 |
| 第1章 绪论 | 第13-24页 |
| 1.1 氯丙醇类化合物概述 | 第13-18页 |
| 1.1.1 食品中氯丙醇的形成概况 | 第13-14页 |
| 1.1.2 食品中氯丙醇的种类及结构特征 | 第14页 |
| 1.1.3 氯丙醇类物质的毒性研究进展 | 第14-17页 |
| 1.1.4 部分国家对于氯丙醇类物质的限量标准 | 第17-18页 |
| 1.2 3-氯-1, 2-丙二醇的结构、危险性评价及检测方法 | 第18-22页 |
| 1.2.1 3-氯-1, 2-丙二醇的来源 | 第18页 |
| 1.2.2 3-MCPD 的吸收分布和生物转化 | 第18-19页 |
| 1.2.3 针对 3-MCPD 的危险性评价 | 第19-20页 |
| 1.2.4 各国关于 3-MCPD 污染情况的调查 | 第20页 |
| 1.2.5 3-MCPD 的检测方法 | 第20-22页 |
| 1.3 研究目的意义 | 第22页 |
| 1.4 主要研究内容 | 第22-24页 |
| 1.4.1 研究路线 | 第23-24页 |
| 第2章 3-氯-1, 2-丙二醇对 BALB/c 小鼠 T 淋巴细胞的影响 | 第24-31页 |
| 2.1 材料与设备 | 第25-27页 |
| 2.1.1 材料与试剂 | 第25-26页 |
| 2.1.2 仪器与设备 | 第26页 |
| 2.1.3 主要试剂的配制 | 第26-27页 |
| 2.2 实验方法 | 第27-29页 |
| 2.2.1 脾细胞悬液的制备 | 第27-28页 |
| 2.2.2 非细胞毒剂量筛选及 ConA 细胞增殖实验 | 第28页 |
| 2.2.3 细胞培养与测定 | 第28页 |
| 2.2.4 统计学处理 | 第28-29页 |
| 2.3 结果与分析 | 第29-30页 |
| 2.3.1 3-MCPD(+)对小鼠 T 淋巴细胞非细胞毒剂量的筛选 | 第29页 |
| 2.3.2 3-MCPD(+)对 ConA 诱导的 T 淋巴细胞增殖的影响 | 第29-30页 |
| 2.4 本章小结 | 第30-31页 |
| 第3章 3-氯-1, 2-丙二醇对 T 细胞表面标志及周期的影响 | 第31-41页 |
| 3.1 材料与设备 | 第33-34页 |
| 3.1.1 实验动物和标准品 | 第33页 |
| 3.1.2 试剂 | 第33页 |
| 3.1.3 仪器与设备 | 第33-34页 |
| 3.1.4 主要试剂的配制 | 第34页 |
| 3.2 实验方法 | 第34-37页 |
| 3.2.1 脾淋巴细胞的诱导 | 第34页 |
| 3.2.2 细胞的培养与固定 | 第34-35页 |
| 3.2.3 流式细胞术检测 3-MCPD(+)对脾中 T 淋巴细胞膜表面标志的影响 | 第35页 |
| 3.2.4 流式细胞术检测 3-MCPD(+)对脾淋巴细胞细胞周期的影响 | 第35-36页 |
| 3.2.5 统计学处理 | 第36-37页 |
| 3.3 结果与分析 | 第37-39页 |
| 3.3.1 流式细胞术分析 3-MCPD(+)对小鼠脾中 T 淋巴细胞 CD4+、CD8+比值的影响 | 第37-38页 |
| 3.3.2 流式细胞术分析 3-MCPD(+)对 ConA 诱导的 T 淋巴细胞周期的影响 | 第38-39页 |
| 3.4 本章小结 | 第39-41页 |
| 第4章 3-氯-1,2-丙二醇对 Th1/Th2 分泌的细胞因子及其表达的影响 | 第41-55页 |
| 4.1 材料与设备 | 第42-45页 |
| 4.1.1 实验动物和标准品 | 第42-43页 |
| 4.1.2 仪器与设备 | 第43-44页 |
| 4.1.3 主要试剂的配制 | 第44页 |
| 4.1.4 引物的序列、大小和条件的选择 | 第44-45页 |
| 4.2 实验方法 | 第45-51页 |
| 4.2.1 IL-2, IL-4, IL-6 , IFN-γ细胞因子的检测 | 第45-47页 |
| 4.2.2 RNA 提取和半定量反转录聚合酶链式反应（RT-PCR）分析 | 第47-51页 |
| 4.2.3 统计学处理 | 第51页 |
| 4.3 结果与分析 | 第51-54页 |
| 4.3.1 不同浓度的 3-MCPD(+)对 Th1/Th2 分泌细胞因子的影响 | 第51-52页 |
| 4.3.2 不同浓度的 3-MCPD(+)对 4 种细胞因子基因表达的影响 | 第52-54页 |
| 4.4 本章小结 | 第54-55页 |
| 第5章 3-氯-1, 2-丙二醇对 ConA 激活的 T 细胞信号转导通路（NF- B、NFAT、AP-1）的影响 | 第55-68页 |
| 5.1 材料与设备 | 第56-59页 |
| 5.1.1 实验动物和标准品 | 第56-58页 |
| 5.1.2 仪器与设备 | 第58页 |
| 5.1.3 主要试剂的配制 | 第58-59页 |
| 5.2 实验方法 | 第59-62页 |
| 5.2.1 细胞内[Ca2+]浓度的测定 | 第59页 |
| 5.2.2 T 细胞纯化 | 第59-60页 |
| 5.2.3 脾细胞蛋白的提取 | 第60-61页 |
| 5.2.4 蛋白免疫印迹分析 | 第61-62页 |
| 5.2.5 统计学分析 | 第62页 |
| 5.3 结果与分析 | 第62-67页 |
| 5.3.1 食品中 3-MCPD(+)对 ConA 激活的细胞内[Ca2+]的影响 | 第62-63页 |
| 5.3.2 食品中 3-MCPD(+)对 ConA 激活的 NF-κB 信号通路的影响 | 第63-65页 |
| 5.3.3 食品中 3-MCPD(+)对 ConA 激活的的 AP-1 信号通路的影响 | 第65-66页 |
| 5.3.4 食品中 3-MCPD(+)对 ConA 激活的 NFAT 信号通路的影响 | 第66-67页 |
| 5.4 本章小结 | 第67-68页 |
| 第6章 3-氯-1, 2-丙二醇对二硝基氟苯(DNFB)所致迟发型超敏反应模型(DTH)的影响 | 第68-73页 |
| 6.1 材料与设备 | 第69-70页 |
| 6.1.1 材料与试剂 | 第69页 |
| 6.1.2 仪器与设备 | 第69页 |
| 6.1.3 主要试剂的配制 | 第69-70页 |
| 6.2 实验方法 | 第70页 |
| 6.3 结果与分析 | 第70-72页 |
| 6.3.1 3-MCPD(+)对 DNFB 诱导的 DTH 小鼠耳部重量的影响 | 第70-71页 |
| 6.3.2 3-MCPD(+)对 DNFB 诱导的 DTH 小鼠模型外耳廓的组织学分析 | 第71-72页 |
| 6.4 本章小结 | 第72-73页 |
| 第7章 结论 | 第73-75页 |
| 7.1 全文结论 | 第73页 |
| 7.2 创新点 | 第73-75页 |
| 参考文献 | 第75-84页 |
| 导师简介 | 第84-85页 |
| 作者简介 | 第85-86页 |
| 攻读学位期间科研成果 | 第86-87页 |
| 致谢 | 第87-88页 |
