| 中文摘要 | 第10-13页 |
| Abstract | 第13-16页 |
| 符号说明 | 第17-19页 |
| 第一章 前言 | 第19-27页 |
| 1. 肝素及其衍生物 | 第19-21页 |
| 1.1 肝素概述 | 第19页 |
| 1.2 肝素及其衍生物的应用 | 第19-20页 |
| 1.3 肝素及其衍生物的制备 | 第20-21页 |
| 2. Heparosan | 第21-25页 |
| 2.1 Heparosan概述 | 第21-22页 |
| 2.2 Heparosan的制备 | 第22-24页 |
| 2.3 Heparosan的应用 | 第24-25页 |
| 3. 本课题研究的目的与意义 | 第25-27页 |
| 3.1 前期研究基础 | 第25-26页 |
| 3.2 本课题拟解决的问题 | 第26-27页 |
| 第二章 Heparosan的制备 | 第27-35页 |
| 1. 实验材料 | 第27-28页 |
| 1.1 菌株 | 第27页 |
| 1.2 培养基 | 第27页 |
| 1.3 实验试剂与耗材 | 第27-28页 |
| 1.4 实验仪器 | 第28页 |
| 2. 实验方法 | 第28-30页 |
| 2.1 Heparosan的提取与纯化 | 第28-29页 |
| 2.2 Heparosan的表征 | 第29页 |
| 2.3 肝素酶的制备 | 第29-30页 |
| 3. 结果与分析 | 第30-33页 |
| 3.1 Heparosan的提取与纯化 | 第30-31页 |
| 3.2 Heparosan的表征 | 第31-33页 |
| 4. 讨论 | 第33-34页 |
| 5. 本章小结 | 第34-35页 |
| 第三章 非动物源肝素衍生物的制备与结构鉴定 | 第35-64页 |
| 1. NS-NAH的制备与表征 | 第35-39页 |
| 1.1 实验材料 | 第35-36页 |
| 1.2 实验方法 | 第36页 |
| 1.3 结果与分析 | 第36-39页 |
| 2. I2S-NS-NAH的制备与表征 | 第39-47页 |
| 2.1 实验材料 | 第39-40页 |
| 2.2 实验方法 | 第40-42页 |
| 2.3 结果与分析 | 第42-47页 |
| 3. 6 S-I2S-NS-NAH的制备与表征 | 第47-53页 |
| 3.1 实验材料 | 第48-49页 |
| 3.2 实验方法 | 第49页 |
| 3.3 结果与分析 | 第49-53页 |
| 4. 6S-NS-NAH的制备与表征 | 第53-58页 |
| 4.1 实验材料 | 第53-54页 |
| 4.2 实验方法 | 第54-55页 |
| 4.3 结果与分析 | 第55-58页 |
| 5. 6 S-I-NS-NAH的制备与表征 | 第58-62页 |
| 5.1 实验材料 | 第59页 |
| 5.2 实验方法 | 第59-60页 |
| 5.3 结果与分析 | 第60-62页 |
| 6. 讨论 | 第62-63页 |
| 7. 本章小结 | 第63-64页 |
| 第四章 Heparosan及其肝素衍生物对肿瘤细胞黏附的影响 | 第64-75页 |
| 1. 实验材料 | 第64-65页 |
| 1.1 实验试剂与耗材 | 第64页 |
| 1.2 实验细胞 | 第64-65页 |
| 1.3 实验仪器 | 第65页 |
| 2. 实验方法 | 第65-67页 |
| 2.1 抗凝活性的测定 | 第65-66页 |
| 2.2 HUVECs的提取、培养与鉴定 | 第66-67页 |
| 2.3 细胞毒性的测定 | 第67页 |
| 2.4 肿瘤细胞粘附内皮细胞实验 | 第67页 |
| 3. 实验结果 | 第67-73页 |
| 3.1 抗凝活性的测定 | 第67-69页 |
| 3.2 人脐静脉内皮细胞的鉴定 | 第69-70页 |
| 3.3 细胞毒性的测定 | 第70-72页 |
| 3.4 肿瘤细胞粘附内皮细胞实验 | 第72-73页 |
| 4. 讨论 | 第73页 |
| 5. 本章小结 | 第73-75页 |
| 第五章 总结与展望 | 第75-77页 |
| 参考文献 | 第77-84页 |
| 致谢 | 第84-85页 |
| 攻读硕士学位期间学术成果 | 第85-86页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第86页 |