| 全文摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-26页 |
| 1 水稻生育期与抽穗期的概念 | 第12-13页 |
| 1.1 基本营养生长性 | 第12-13页 |
| 1.2 感光性 | 第13页 |
| 1.3 感温性 | 第13页 |
| 2 水稻抽穗期QTL定位与互作研究 | 第13-14页 |
| 3 水稻抽穗期基因的克隆和功能分析 | 第14-21页 |
| 3.1 水稻抽穗期感光基因Se-5的克隆 | 第14页 |
| 3.2 Hd1的克隆及功能分析 | 第14-15页 |
| 3.3 Hd6的克隆及功能分析 | 第15-16页 |
| 3.4 Hd3a的克隆及功能分析 | 第16-17页 |
| 3.5 RFT1的克隆与功能分析 | 第17-18页 |
| 3.6 MADS-box转录因子 | 第18-19页 |
| 3.7 Ehd1的克隆及功能分析 | 第19页 |
| 3.8 OsGI的克隆与功能分析 | 第19-20页 |
| 3.9 RID1/OsID1/Ehd2的克隆与功能分析 | 第20页 |
| 3.10 Ghd7的克隆及其对水稻抽穗期的影响 | 第20-21页 |
| 4 水稻抽穗期基因与拟南芥成花基因的比较 | 第21-23页 |
| 4.1 水稻和拟南芥具有保守的光周期调控开花途径 | 第21-23页 |
| 4.2 水稻抽穗期基因与拟南芥成花基因又各有其自身特点 | 第23页 |
| 5 水稻抽穗期研究尚存在的主要问题 | 第23-25页 |
| 5.1 水稻抽穗期QTL的分离和克隆 | 第23-24页 |
| 5.2 水稻抽穗期QTL的感光性与上位性鉴定 | 第24页 |
| 5.3 控制水稻抽穗期的感温基因的发掘与克隆 | 第24页 |
| 5.4 水稻抽穗期遗传网络的完善 | 第24页 |
| 5.5 水稻抽穗期基因/QTL的育种应用 | 第24-25页 |
| 6 本研究的主要内容 | 第25-26页 |
| 第二章 水稻抽穗期QTL定位及感光QTL dth2的单基因分解与精细定位 | 第26-42页 |
| 摘要 | 第26-28页 |
| 1 材料和方法 | 第28-31页 |
| 1.1 供试材料 | 第28页 |
| 1.2 田间试验 | 第28-29页 |
| 1.3 抽穗期鉴定标准 | 第29页 |
| 1.4 DNA提取,PCR程序以及DNA分子标记分析 | 第29-30页 |
| 1.5 QTL定位和统计分析 | 第30-31页 |
| 1.6 dth2的精细定位 | 第31页 |
| 1.7 候选基因预测、测序以及BLAST分析 | 第31页 |
| 2 结果 | 第31-39页 |
| 2.1 利用Asominori×IR24 RIL群体检测水稻抽穗期QTLs | 第31-32页 |
| 2.2 染色体片段置换系CSSL23同时含有抽穗期QTL dth2和dth3 | 第32-33页 |
| 2.3 CSSL23超亲迟熟的遗传基础 | 第33页 |
| 2.4 抽穗期QTL dth2的精细定位 | 第33-37页 |
| 2.5 精细定位区间内可能的候选基因 | 第37-39页 |
| 3 讨论 | 第39-42页 |
| 3.1 利用两个遗传作图群体均检测到的抽穗期QTL dth2是一个尚待克隆的基因 | 第39页 |
| 3.2 抽穗期QTL dth2和dth3具有相互独立的晚熟效应 | 第39-40页 |
| 3.3 dth2基因的精细定位 | 第40页 |
| 3.4 抽穗期QTL dth2候选基因预测 | 第40-42页 |
| 第三章 控制水稻低温生长的感温基因LTG1的图位克隆与功能分析 | 第42-74页 |
| 摘要 | 第42-43页 |
| 1 材料和方法 | 第43-51页 |
| 1.1 供试材料 | 第43页 |
| 1.2 田间材料种植 | 第43页 |
| 1.3 抽穗期和产量性状调查 | 第43页 |
| 1.4 扫描电镜观察 | 第43-45页 |
| 1.5 基因LTG1的精细定位 | 第45页 |
| 1.6 转基因载体构建 | 第45页 |
| 1.7 农杆菌介导的水稻遗传转化 | 第45-46页 |
| 1.8 生物信息学分析 | 第46页 |
| 1.9 亚细胞定位 | 第46页 |
| 1.10 原核表达 | 第46-49页 |
| 1.11 重组蛋白定量和酶活分析 | 第49页 |
| 1.12 RNA的提取,RT-PCR和Real-time PCR | 第49-50页 |
| 1.12.1 总RNA提取 | 第49-50页 |
| 1.12.2 RT-PCR | 第50页 |
| 1.12.3 Real-time PCR | 第50页 |
| 1.13 GUS活性的组织化学染色分析 | 第50页 |
| 1.14 基因芯片分析 | 第50-51页 |
| 1.15 节律表达材料种植及取样 | 第51页 |
| 2 结果与分析 | 第51-69页 |
| 2.1 LTG1的遗传分析与初步定位 | 第51页 |
| 2.2 近等基因系构建与表型描述 | 第51-54页 |
| 2.3 LTG1的图位克隆与转基因分析 | 第54-58页 |
| 2.4 LTG1编码一个Casein kinase Ⅰ蛋白 | 第58-61页 |
| 2.5 LTG1的表达模式分析 | 第61-62页 |
| 2.6 LTG1可能参与ABA调控途径 | 第62-65页 |
| 2.7 LTG1与已克隆的抽穗期基因的关系 | 第65-66页 |
| 2.8 LTG1是一个驯化相关基因 | 第66页 |
| 2.9 LTG1在北方温带地区种植时控制着水稻的株高和产量 | 第66-68页 |
| 2.10 LTG1在两系杂交稻杂交制种中的潜在应用 | 第68-69页 |
| 3 讨论 | 第69-74页 |
| 3.1 LTG1的图位克隆 | 第69-70页 |
| 3.2 LTG1编码一个酪蛋白激酶(Casein kinase Ⅰ)亚家族蛋白 | 第70页 |
| 3.3 LTG1中的突变位点位于COOH—端非催化结构域 | 第70-71页 |
| 3.4 LTG1控制低温生长的作用机理初探 | 第71页 |
| 3.5 LTG1可能的驯化过程 | 第71-72页 |
| 3.6 LTG1对水稻株高、产量的影响 | 第72-73页 |
| 3.7 LTG1潜在的育种价值 | 第73-74页 |
| 第四章 全文结论 | 第74-80页 |
| 4.1 dth2被最终限定在56.8kb的区间范围内 | 第74-75页 |
| 4.2 dth2可能是一个编码Zn-finger家族蛋白的基因 | 第75页 |
| 4.3 dth2是一个仅在长日照下延迟抽穗的感光基因 | 第75页 |
| 4.4 感光性相同的抽穗期基因/QTLs的效应积累可能是导致水稻超亲晚熟的主要原因 | 第75-76页 |
| 4.5 LTG1是一个控制低温生长的温敏基因 | 第76页 |
| 4.6 LTG1被成功的分离和克隆 | 第76页 |
| 4.7 LTG1在Asominori和NIL(ltg1)之间的突变可能导致识别底物的改变 | 第76页 |
| 4.8 LTG1是组成性表达基因并且可能控制细胞分裂 | 第76-77页 |
| 4.9 LTG1可能参与的调控途径 | 第77页 |
| 4.10 LTG1可能是人们经过长期自然选择而保存下来的 | 第77页 |
| 4.11 LTG1的育种价值 | 第77-78页 |
| 4.12 本研究的主要创新点 | 第78-80页 |
| 参考文献 | 第80-94页 |
| 附录 | 第94-110页 |
| 在读期间发表论文 | 第110-112页 |
| 致谢 | 第112页 |
