| 目录 | 第4-7页 |
| CONTENTS | 第7-11页 |
| 摘要 | 第11-14页 |
| ABSTRACT | 第14-16页 |
| 1 绪论 | 第17-65页 |
| 1.1 荧光现象 | 第17-24页 |
| 1.1.1 荧光产生过程 | 第17-18页 |
| 1.1.2 荧光光谱 | 第18-19页 |
| 1.1.3 荧光测量 | 第19-22页 |
| 1.1.4 荧光输出 | 第22-23页 |
| 1.1.5 荧光环境敏感性 | 第23-24页 |
| 1.2 双光子吸收简介 | 第24-32页 |
| 1.2.1 双光子吸收截面 | 第26-27页 |
| 1.2.2 双光子吸收光谱 | 第27-28页 |
| 1.2.3 双光子吸收的各向异性 | 第28-29页 |
| 1.2.4 多光子显微镜 | 第29页 |
| 1.2.5 多光子显微镜的几个应用实例 | 第29-32页 |
| 1.3 光物理机理 | 第32-35页 |
| 1.3.1 光诱导电子转移(Photoinduced Electron Transfer,PET) | 第32-34页 |
| 1.3.2 分子内电荷转移(Intramolecular Charge Transfer,ICT) | 第34-35页 |
| 1.3.3 共振能量转移(Resonance Energy Transfer,RET) | 第35页 |
| 1.4 活细胞荧光探针的设计标准 | 第35-37页 |
| 1.4.1 传输性 | 第36页 |
| 1.4.2 靶向性 | 第36页 |
| 1.4.3 可探测性 | 第36-37页 |
| 1.5 活细胞荧光探针举例 | 第37-49页 |
| 1.5.1 用于探测细胞金属离子的荧光探针 | 第37-40页 |
| 1.5.2 用于探测生物体活性物质的荧光探针 | 第40-41页 |
| 1.5.3 线粒体探针研究现状 | 第41-43页 |
| 1.5.4 酶探针的研究 | 第43-44页 |
| 1.5.5 用于生物成像的H2S荧光探针的研究 | 第44-46页 |
| 1.5.6 生物体内pH荧光探针的研究 | 第46-49页 |
| 1.6 双光子活细胞荧光探针举例 | 第49-51页 |
| 1.6.1 探测金属离子的双光子荧光探针 | 第49-51页 |
| 1.6.2 用于细胞内酸性器官成像的双光子探针 | 第51页 |
| 1.6.3 用于探测小分子的双光子荧光探针 | 第51页 |
| 1.7 论文的研究意义、主要内容以及创新点 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-65页 |
| 2 用于活细胞和活组织成像以及定量测量细胞内pH值的单/双光子比例荧光探针 | 第65-117页 |
| 2.1 双光子pH比例探针的合成与表征 | 第66-69页 |
| 2.1.1 实验仪器和试剂 | 第66-67页 |
| 2.1.2 双光子pH比例荧光探针的合成 | 第67-69页 |
| 2.2 光谱测量 | 第69-76页 |
| 2.2.1 PCBT在不同溶剂中线性光谱研究 | 第70-71页 |
| 2.2.2 PCBT在酸性和碱性环境光谱性质 | 第71-73页 |
| 2.2.3 不同pH下PCBT的光物理性质 | 第73-74页 |
| 2.2.4 PCBT对各种阴阳离子的选择性 | 第74-75页 |
| 2.2.5 PCBT在酸性条件下光稳定性实验 | 第75-76页 |
| 2.3 PCBT对于SiHa细胞毒性实验 | 第76-77页 |
| 2.4 PCBT用于活细胞成像研究 | 第77-80页 |
| 2.4.1 细胞培养和染色 | 第78页 |
| 2.4.2 激光共聚焦显微镜和双光子激光共聚焦显微镜 | 第78页 |
| 2.4.3 PCBT用于活细胞内pH单光子共聚焦显微荧光成像 | 第78-79页 |
| 2.4.4 PCBT用于活细胞内pH双光子共聚焦显微荧光成像 | 第79-80页 |
| 2.5 PCBT用于细胞内单/双光子pH比例荧光探针研究 | 第80-82页 |
| 2.5.1 PCBT作为单光子pH比例荧光探针的研究 | 第80-81页 |
| 2.5.2 PCBT作为双光子pH比例荧光探针的研究 | 第81-82页 |
| 2.6 PCBT用于定量测量活细胞内pH研究 | 第82-86页 |
| 2.6.1 改变细胞内pH值标准方法 | 第82页 |
| 2.6.2 用PCBT定量测量细胞内pH值 | 第82-86页 |
| 2.7 PCBT用于活组织双光子激光共聚焦显微荧光成像 | 第86-111页 |
| 2.7.1 SD鼠幼鼠肝、肾活组织切片的制备和染色 | 第86-87页 |
| 2.7.2 PCBT用于活肝脏组织切片深度成像的研究 | 第87-101页 |
| 2.7.3 PCBT用于活肾脏组织切片深度成像的研究 | 第101-111页 |
| 2.8 本章小结 | 第111-112页 |
| 参考文献 | 第112-117页 |
| 3 用于活细胞成像的线粒体荧光探针的研究 | 第117-133页 |
| 3.1 线粒体探针的设计、合成和表征 | 第117-121页 |
| 3.1.1 实验仪器和试剂 | 第118页 |
| 3.1.2 线粒体荧光探针的合成 | 第118-121页 |
| 3.2 光谱测量 | 第121-123页 |
| 3.2.1 APPI和ECPI光物理性质研究 | 第121-122页 |
| 3.2.2 pH对APPI和ECPI荧光光谱的影响 | 第122-123页 |
| 3.3 APPI和ECPI对于SiHa细胞毒性研究 | 第123-124页 |
| 3.4 APPI和ECPI用于SiHa细胞成像研究 | 第124-129页 |
| 3.4.1 细胞培养和染色 | 第124页 |
| 3.4.2 激光共聚焦显微镜 | 第124页 |
| 3.4.3 APPI和ECPI用于活细胞内成像 | 第124-125页 |
| 3.4.4 活细胞APPI、ECPI和MTR红荧光共定位 | 第125-129页 |
| 3.5 本章小结 | 第129-130页 |
| 参考文献 | 第130-133页 |
| 4 用于活细胞成像咔唑和三苯胺衍生物荧光染料的研究 | 第133-145页 |
| 4.1 咔唑和三苯胺荧光染料的设计、合成和表征 | 第133-136页 |
| 4.1.1 实验仪器和试剂 | 第133-134页 |
| 4.1.2 咔唑衍生物的合成 | 第134-135页 |
| 4.1.3 三苯胺衍生物的合成 | 第135-136页 |
| 4.2 光谱测量 | 第136-138页 |
| 4.3 咔唑和三苯胺衍生物对于SiHa细胞毒性研究 | 第138页 |
| 4.4 咔唑和三苯胺衍生物用于SiHa细胞成像研究 | 第138-141页 |
| 4.4.1 细胞培养和染色 | 第139页 |
| 4.4.2 激光共聚焦显微镜 | 第139页 |
| 4.4.3 咔唑和三苯胺衍生物用于活细胞成像 | 第139-141页 |
| 4.5 本章小结 | 第141-142页 |
| 参考文献 | 第142-145页 |
| 5 总结与展望 | 第145-148页 |
| 5.1 全文总结 | 第145-146页 |
| 5.2 有待开展的工作 | 第146-148页 |
| 附录 | 第148-157页 |
| 致谢 | 第157-158页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第158-159页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第159页 |
