| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 中英文缩略词表 | 第9-11页 |
| 第1章 引言 | 第11-14页 |
| 第2章 材料与方法 | 第14-29页 |
| 2.1 实验材料 | 第14-18页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第14页 |
| 2.1.2 主要实验试剂 | 第14-15页 |
| 2.1.3 仪器及设备 | 第15-16页 |
| 2.1.4 相关药物药剂的配制 | 第16-18页 |
| 2.2 实验方法 | 第18-29页 |
| 2.2.1 器材的准备 | 第18页 |
| 2.2.2 BMSCs的分离、培养、纯化 | 第18-19页 |
| 2.2.3 BMSCs相关鉴定 | 第19-20页 |
| 2.2.4 H_2O_2凋亡浓度及时间选择 | 第20页 |
| 2.2.5 山奈酚适宜浓度及时间选择 | 第20页 |
| 2.2.6 实验分组 | 第20-21页 |
| 2.2.7 流式细胞术检测 | 第21页 |
| 2.2.8 RT-PCR及Western blot检测 | 第21-28页 |
| 2.2.9 统计学处理方法 | 第28-29页 |
| 第3章 结果 | 第29-38页 |
| 3.1 BMSCs的形态学观察与相关鉴定 | 第29-31页 |
| 3.1.1 BMSCs的形态学观察 | 第29页 |
| 3.1.2 BMSCs生成曲线绘制 | 第29-30页 |
| 3.1.3 BMSCs表面抗原鉴定 | 第30-31页 |
| 3.2 不同浓度梯度下细胞活力比较 | 第31-33页 |
| 3.2.1 H_2O_2对BMSCs活力的影响 | 第31-32页 |
| 3.2.2 山奈酚对H_2O_2处理下BMSCs活力的影响 | 第32-33页 |
| 3.3 各组流式细胞技术测量结果 | 第33-35页 |
| 3.3.1 各组细胞调亡率 | 第33-34页 |
| 3.3.2 各组细胞活性氧水平 | 第34-35页 |
| 3.4 RT-PCR及Western blot技术测量结果 | 第35-38页 |
| 3.4.1 FoxO3a、CAT、Gadd45a表达水平 | 第35-36页 |
| 3.4.2 FoxO3a蛋白表达量及分布 | 第36-38页 |
| 第4章 讨论 | 第38-41页 |
| 4.1 BMSCs概述及特性 | 第38-39页 |
| 4.2 氧化应激与BMSCs凋亡 | 第39页 |
| 4.3 山奈酚抗BMSCs氧化凋亡功能 | 第39-40页 |
| 4.4 山奈酚与ROS/FoxO/CAT(Gadd45a）信号及BMSCs氧化凋亡 | 第40-41页 |
| 第5章 结论与展望 | 第41-42页 |
| 5.1 结论 | 第41页 |
| 5.2 展望 | 第41-42页 |
| 致谢 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-47页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第47-48页 |
| 综述 活性氧诱导细胞凋亡的研究进展 | 第48-57页 |
| 参考文献 | 第54-57页 |
