| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第11-22页 |
| 1.1 SiO_2纳米复合粒子的特点及其应用 | 第11-16页 |
| 1.1.1 SiO_2纳米粒子及其复合粒子概述 | 第11-12页 |
| 1.1.2 SiO_2纳米粒子及复合粒子的制备方法 | 第12页 |
| 1.1.3 SiO_2纳米粒子及其复合粒子在生物医学中的应用 | 第12-16页 |
| 1.2 固定化酶的研究进展 | 第16-17页 |
| 1.2.1 固定化酶的特点 | 第16页 |
| 1.2.2 生物酶的固定化方法 | 第16-17页 |
| 1.3 光纤生物传感器的特点及其研究进展 | 第17-19页 |
| 1.3.1 光纤生物传感器概述 | 第17-18页 |
| 1.3.2 多参数光纤生物传感器的研究进展 | 第18-19页 |
| 1.4 选题的目的、意义和主要研究内容 | 第19-22页 |
| 1.4.1 选题目的、意义 | 第19-21页 |
| 1.4.2 课题的来源 | 第21页 |
| 1.4.3 主要研究内容 | 第21-22页 |
| 第二章 荧光SiO_2纳米粒子的制备及固定化GOD性能研究 | 第22-37页 |
| 2.1 实验部分 | 第22-24页 |
| 2.1.1 试剂及仪器 | 第22-23页 |
| 2.1.2 荧光SiO_2纳米复合粒子的制备、表征及其长期稳定性 | 第23页 |
| 2.1.3 以荧光SiO_2纳米复合粒子为载体固定GOD | 第23-24页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第24-36页 |
| 2.2.1 荧光SiO_2纳米复合粒子的制备与表征 | 第24-28页 |
| 2.2.2 荧光SiO_2纳米复合粒子的长期稳定性研究 | 第28页 |
| 2.2.3 荧光SiO_2纳米复合粒子固定GOD的最优化条件 | 第28-32页 |
| 2.2.4 荧光SiO_2纳米复合粒子固定化GOD的最适使用条件：pH值和最佳催化温度 | 第32-33页 |
| 2.2.5 荧光SiO_2纳米复合粒子固定化GOD的稳定性 | 第33-36页 |
| 2.3 本章小结 | 第36-37页 |
| 第三章 荧光SiO_2纳米复合粒子固定化COD性能研究 | 第37-47页 |
| 3.1 实验部分 | 第37-39页 |
| 3.1.1 试剂及仪器 | 第37-38页 |
| 3.1.2 以荧光SiO_2纳米复合粒子为载体固定COD | 第38-39页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第39-46页 |
| 3.2.1 荧光SiO_2纳米复合粒子固定COD的最优化条件 | 第39-42页 |
| 3.2.2 荧光SiO_2纳米复合粒子固定化COD的最适使用pH值和最佳催化温度 | 第42-43页 |
| 3.2.3 荧光SiO_2纳米复合粒子固定化COD的稳定性 | 第43-46页 |
| 3.3 本章小结 | 第46-47页 |
| 第四章 具有酶催化和光学氧敏性的多孔SiO_2纳米复合粒子研究 | 第47-65页 |
| 4.1 氧气敏感性能检测原理 | 第47-49页 |
| 4.2 实验部分 | 第49-52页 |
| 4.2.1 试剂及仪器 | 第49-50页 |
| 4.2.2 多孔荧光SiO_2纳米复合粒子的制备及表征 | 第50页 |
| 4.2.3 以多孔荧光SiO_2纳米复合粒子为载体固定GOD | 第50页 |
| 4.2.4 多孔荧光SiO_2纳米复合粒子固定化酶的酶活测定方法 | 第50-51页 |
| 4.2.5 氧气敏感性的检测 | 第51-52页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第52-63页 |
| 4.3.1 多孔荧光SiO_2纳米复合粒子的制备与表征 | 第52-54页 |
| 4.3.2 多孔荧光SiO_2纳米复合粒子固定GOD的最优化条件 | 第54-57页 |
| 4.3.3 固定化GOD的最适使用pH值和最佳催化温度 | 第57-59页 |
| 4.3.4 多孔荧光SiO_2纳米复合粒子固定化GOD的稳定性 | 第59-61页 |
| 4.3.5 荧光SiO_2纳米复合粒子和多孔荧光SiO_2纳米复合粒子对氧气的响应 | 第61-62页 |
| 4.3.6 利用多孔荧光SiO_2纳米复合粒子对氧气浓度的检测曲线 | 第62-63页 |
| 4.4 本章小结 | 第63-65页 |
| 第五章 总结及展望 | 第65-67页 |
| 5.1 结论 | 第65-66页 |
| 5.2 展望 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-71页 |
| 作者在攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第71-72页 |
| 致谢 | 第72页 |
