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核桃sHSP家族基因筛选、响应模式及JrsHSP17.3基因的抗逆功能分析

摘要第6-8页
ABSTRACT第8-9页
第一章 文献综述第13-20页
    1.1 引言第13-14页
    1.2 低温对植物的影响第14页
    1.3 热激蛋白的研究概述第14-18页
        1.3.1 热激蛋白简介第14-15页
        1.3.2 热激蛋白的功能第15-16页
        1.3.3 小分子热激蛋白(sHSPs)的结构第16-17页
        1.3.4 小分子热激蛋白(sHSP)的分类第17页
        1.3.5 小分子热激蛋白(sHSP)简介与功能第17-18页
    1.4 本研究的目的、意义第18-19页
    1.5 本研究的内容及技术路线第19-20页
第二章 核桃sHSP家族基因筛选及确认第20-39页
    2.1 试验材料第20页
        2.1.1 植物材料第20页
        2.1.2 菌种与载体第20页
        2.1.3 主要试剂第20页
        2.1.4 溶液配制第20页
    2.2 试验方法第20-24页
        2.2.1 核桃sHSP家族基因的筛选第20-21页
        2.2.2 JrsHSP17.3 和JrsHSP20-1 基因的克隆第21-24页
        2.2.3 实时定量PCR第24页
    2.3 结果与分析第24-37页
        2.3.1 sHSP家族基因的序列特征第24-25页
        2.3.2 核桃sHSP家族基因的跨膜区预测第25-26页
        2.3.3 核桃sHSP家族蛋白序列分析第26-29页
        2.3.4 核桃sHSP家族基因的进化分析第29页
        2.3.5 核桃sHSP家族基因蛋白结构预测第29-32页
        2.3.6 核桃sHSP家族基因的表达特征第32页
        2.3.7 JrsHSP17.3 基因和JrsHSP20-1 基因的定量表达分析第32-37页
    2.4 讨论第37页
    2.5 本章小结第37-39页
第三章 转JrsHSP17.3 和JrsHSP20-1 的酵母抗逆性分析第39-51页
    3.1 试验材料第39页
        3.1.1 菌株和载体第39页
        3.1.2 主要试剂第39页
    3.2 试验方法第39-42页
        3.2.1 酵母表达载体的构建第39-41页
        3.2.2 重组质粒和pYES2质粒的酵母转化及鉴定第41页
        3.2.3 重组酵母的胁迫实验第41-42页
    3.3 结果与分析第42-49页
        3.3.1 表达载体及酵母重组子的获得第42-45页
        3.3.2 重组酵母的抗性分析第45-49页
    3.4 讨论第49-50页
    3.5 本章小结第50-51页
第四章 JrsHSP17.3 基因在核桃中的瞬时表达分析第51-70页
    4.1 试验材料第51-52页
        4.1.1 植物材料第51页
        4.1.2 菌种与载体第51页
        4.1.3 主要试剂第51页
        4.1.4 培养基和溶液的配制第51-52页
    4.2 试验方法第52-60页
        4.2.1 核桃JrsHSP17.3 基因的过表达载体的构建第52-55页
        4.2.2 瞬时侵染核桃叶第55-56页
        4.2.3 瞬时转化核桃JrsHSP17.3 基因的表达分析第56页
        4.2.4 瞬时转化核桃的Southern杂交鉴定第56-57页
        4.2.5 Evans blue染色第57页
        4.2.6 瞬时转化核桃JrsHSP17.3 基因的生理指标测定第57-60页
    4.3 结果与分析第60-68页
        4.3.1 核桃过表达载体的构建第60-61页
        4.3.2 转JrsHSP17.3 核桃的southern杂交分析第61页
        4.3.3 JrsHSP17.3 基因的瞬时表达分析第61-62页
        4.3.4 利用Evans blue研究瞬时侵染核桃幼苗细胞受损情况第62-63页
        4.3.5 转JrsHSP17.3 基因核桃的生理指标分析第63-68页
    4.6 讨论第68-69页
    4.7 本章小结第69-70页
结论第70-71页
参考文献第71-76页
致谢第76-77页
作者简介第77页

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