| 中文摘要 | 第6-10页 |
| ABSTRACT | 第10-14页 |
| 英文缩略表 | 第15-16页 |
| 文献综述 | 第16-22页 |
| 前言 | 第22-23页 |
| 一、清热活血方抑制CIA大鼠滑膜血管新生的机制研究 | 第23-44页 |
| 1. 材料与试剂 | 第23-26页 |
| 1.1 实验动物 | 第23页 |
| 1.2 实验药品和试剂 | 第23-25页 |
| 1.3 仪器设备 | 第25-26页 |
| 2. 实验方法 | 第26-31页 |
| 2.1 清热活血方的制备 | 第26页 |
| 2.2 动物分组及给药 | 第26页 |
| 2.3 CIA大鼠模型的建立 | 第26页 |
| 2.4 发病严重程度相关指标检测 | 第26-27页 |
| 2.5 取材及组织处理方法 | 第27页 |
| 2.6 清热活血方对大鼠血清中血管新生相关因子影响 | 第27页 |
| 2.7 清热活血方对大鼠踝关节组织PI3K/Akt相关蛋白表达的影响 | 第27-29页 |
| 2.8 清热活血方对大鼠膝关节滑膜组织PLGF、Flt1、Flk1、PTEN mRNA表达的影响 | 第29-31页 |
| 2.9 统计方法 | 第31页 |
| 3. 实验结果 | 第31-40页 |
| 3.1 清热活血方对关节肿胀度和体重的影响 | 第31-33页 |
| 3.2 清热活血方对大鼠血清中血管新生相关因子含量的影响 | 第33-34页 |
| 3.3 清热活血方对大鼠踝关节组织PI3K/Akt相关蛋白表达的影响 | 第34-36页 |
| 3.4 清热活血方对大鼠膝关节滑膜组织PLGF、Flt1、Flk1、PTEN mRNA表达的影响 | 第36-40页 |
| 4. 讨论 | 第40-43页 |
| 5. 小结 | 第43-44页 |
| 二、清热活血方对体外培养RA-FLS和HUVEC的影响及机制研究 | 第44-68页 |
| 1. 材料与试剂 | 第44-47页 |
| 1.1 实验细胞 | 第44页 |
| 1.2 实验药品和试剂 | 第44-47页 |
| 1.3 仪器设备 | 第47页 |
| 2. 实验方法 | 第47-53页 |
| 2.1 清热活血方的制备 | 第47-48页 |
| 2.2 RA-FLS的分离培养 | 第48页 |
| 2.3 RA-FLS的传代培养 | 第48页 |
| 2.4 HUVEC的传代培养 | 第48-49页 |
| 2.5 MTS法检测细胞增殖活性 | 第49页 |
| 2.6 清热活血方对细胞迁移的影响 | 第49-50页 |
| 2.7 清热活血方对细胞黏附的影响 | 第50页 |
| 2.8 清热活血方对VEGF_(165)诱导HUVEC管腔形成的影响 | 第50页 |
| 2.9 清热活血方对血管新生相关因子的影响 | 第50-51页 |
| 2.10 清热活血方对PI3K/Akt信号途径相关蛋白表达的影响 | 第51-52页 |
| 2.11 统计方法 | 第52-53页 |
| 3. 实验结果 | 第53-66页 |
| 3.1 细胞形态观察 | 第53页 |
| 3.2 清热活血方对细胞增殖活性的影响 | 第53-55页 |
| 3.3 清热活血方对细胞迁移的影响 | 第55-58页 |
| 3.4 清热活血方对细胞黏附的影响 | 第58-59页 |
| 3.5 清热活血方对HUVEC管腔形成的影响 | 第59-60页 |
| 3.6 清热活血方对RA血管新生相关因子含量的影响 | 第60-63页 |
| 3.7 清热活血方对PI3K/Akt通路蛋白表达的影响 | 第63-66页 |
| 4. 讨论 | 第66-67页 |
| 5. 小结 | 第67-68页 |
| 全文总结 | 第68-69页 |
| 结论 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 个人简历 | 第76页 |
