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力竭运动诱导的大鼠红细胞氧化应激表现及发生机制的研究

摘要第3-5页
ABSTRACT第5-7页
英文缩略词列表第12-14页
1 绪论第14-20页
    1.1 研究背景第14-16页
        1.1.1 自由基、活性氧与氧化应激第14页
        1.1.2 运动与氧化应激第14页
        1.1.3 氧化应激与红细胞损伤第14-16页
    1.2 问题的提出及研究意义第16-17页
        1.2.1 问题的提出第16-17页
        1.2.2 研究意义第17页
    1.3 研究的内容和目的第17-18页
    1.4 本课题的创新点第18-20页
2 红细胞生物学概述第20-32页
    2.1 红细胞生理功能第20页
    2.2 红细胞结构第20-26页
        2.2.1 红细胞膜第20-22页
        2.2.2 血红蛋白第22-26页
    2.3 红细胞代谢第26-32页
        2.3.1 红细胞能量代谢第26-28页
        2.3.2 红细胞自由基代谢第28-32页
3 力竭运动诱导的大鼠红细胞氧化应激反应第32-58页
    3.1 引言第32页
    3.2 材料和方法第32-48页
        3.2.1 实验对象和动物模型第32-34页
        3.2.2 红细胞膜蛋白的提取第34-35页
        3.2.3 胞内 GSH 含量测定第35-37页
        3.2.4 胞内 SOD 活性测定第37-38页
        3.2.5 胞内 CAT 活性测定第38-40页
        3.2.6 膜蛋白巯基含量测定第40-41页
        3.2.7 膜脂 TBARS 含量测定第41-43页
        3.2.8 血红蛋白、高铁血红蛋白膜与结合高铁血色原含量测定第43-45页
        3.2.9 红细胞膜蛋白 SDS-PAGE第45-48页
        3.2.10 数据统计分析第48页
    3.3 实验结果第48-53页
        3.3.1 力竭运动对膜蛋白 SH 的影响第49页
        3.3.2 力竭运动对红细胞抗氧化能力的影响第49-50页
        3.3.3 力竭运动对膜脂质 TBARS 的影响第50-51页
        3.3.4 力竭运动对血红蛋白的影响第51-52页
        3.3.5 力竭运动诱导红细胞膜蛋白 SDS-PAGE 图谱的影响第52-53页
    3.4 分析讨论第53-55页
    3.5 本章小结第55-58页
4 力竭运动对大鼠红细胞力学性质和携氧功能的影响第58-70页
    4.1 引言第58-59页
    4.2 材料和方法第59-62页
        4.2.1 红细胞变形指数(EI)测定第59页
        4.2.2 红细胞氧解离曲线的绘制第59-61页
        4.2.3 红细胞 2,3-DPG 含量检测第61-62页
        4.2.4 数据统计分析第62页
    4.3 实验结果第62-66页
        4.3.1 力竭运动对红细胞变形指数(EI)的影响第62-63页
        4.3.2 力竭运动对大鼠红细胞 P_(50)的影响第63-64页
        4.3.3 力竭运动对大鼠红细胞 T_(50)的影响第64-65页
        4.3.4 蛋白交联和磷酸化对 RBC 携氧功能的影响第65-66页
    4.4 分析讨论第66-68页
    4.5 本章小结第68-70页
5 力竭运动诱导的氧化应激反应对大鼠红细胞 BAND 3 蛋白的影响第70-82页
    5.1 引言第70-71页
    5.2 材料和方法第71-76页
        5.2.1 红细胞膜蛋白 Western Blot第71-73页
        5.2.2 红细胞膜 Band 3 蛋白免疫荧光分析第73-75页
        5.2.3 红细胞阴离子转运能力检测第75-76页
        5.2.4 数据统计分析第76页
    5.3 实验结果第76-79页
        5.3.1 红细胞 Band 3 和 spectrin 蛋白免疫荧光染色结果第76-77页
        5.3.2 力竭运动对 Band 3 蛋白交联和磷酸化的影响第77-78页
        5.3.3 力竭运动对 PTP1B 和 PTK 的影响第78页
        5.3.4 力竭运动对红细胞阴离子转运能力的影响第78-79页
    5.4 分析讨论第79-81页
    5.5 本章小结第81-82页
6 环境氧分压与红细胞氧化损伤的关系第82-96页
    6.1 引言第82-84页
    6.2 材料和方法第84-88页
        6.2.1 实验对象和体外氧化模型第84-86页
        6.2.2 NADPtotal/NADPH 检测第86-87页
        6.2.3 GSSG/GSHtotal 检测第87-88页
        6.2.4 数据统计分析第88页
    6.3 实验结果第88-93页
        6.3.1 体外黄嘌呤氧化系统对红细胞膜蛋白巯基的影响第88-89页
        6.3.2 体外黄嘌呤氧化系统对红细胞膜蛋白的修饰第89-90页
        6.3.3 体外黄嘌呤氧化系统对红细胞血红蛋白和膜脂质的修饰第90-91页
        6.3.4 体外黄嘌呤氧化系统对红细胞抗氧化能力的影响第91-93页
    6.4 分析讨论第93-94页
    6.5 本章小结第94-96页
7 力竭恢复阶段大鼠红细胞氧化应激表现第96-108页
    7.1 引言第96页
    7.2 材料和方法第96-99页
        7.2.1 实验对象和动物模型第96-97页
        7.2.2 血浆促红细胞生成素检测第97-98页
        7.2.3 红细胞磷脂酰丝氨酸外翻检测第98-99页
        7.2.4 数据统计分析第99页
    7.3 实验结果第99-104页
        7.3.1 力竭恢复阶段大鼠红细胞抗氧化能力变化第100-101页
        7.3.2 力竭恢复阶段大鼠红细胞氧化应激状态变化第101-102页
        7.3.3 力竭恢复阶段大鼠红细胞膜蛋白变化第102-103页
        7.3.4 力竭恢复阶段大鼠红细胞变性能力变化第103-104页
        7.3.5 力竭恢复阶段大鼠红细胞凋亡变化第104页
    7.4 分析讨论第104-106页
    7.5 本章小结第106-108页
8 结论与展望第108-110页
    8.1 主要结论第108-109页
    8.2 不足之处与后续工作展望第109-110页
致谢第110-112页
参考文献第112-126页
附录第126-127页
    A. 作者在攻读学位期间发表的论文目录第126页
    B. 参加科研项目情况第126-127页

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