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携带IL-24基因的E1区双调控溶瘤腺病毒治疗肿瘤的研究

摘要第1-8页
Abstract第8-10页
缩略词第10-13页
第一章 癌症研究现状和癌症靶向基因病毒治疗的概述第13-20页
   ·癌症治疗的研究现状第13-15页
   ·溶瘤腺病毒的发展与研究概述第15-17页
     ·腺病毒的结构特点及腺病毒载体的应用优势和分类第15-16页
     ·肿瘤特异性增殖腺病毒的构建策略第16页
     ·E1 区改造的溶瘤腺病毒的发展过程介绍第16-17页
   ·Survivin 与肿瘤靶向第17-18页
   ·肿瘤治疗基因mda-7/IL-24 在肿瘤治疗中的应用简介第18-20页
第二章 Survivin 启动子调控 E1A 和E1B 双调控溶瘤腺病毒表达IL-24 蛋白对肿瘤的治疗研究第20-54页
   ·实验材料第20-23页
     ·菌株与质粒第20页
     ·腺病毒第20页
     ·工具酶及生化试剂第20-21页
     ·细胞株第21-22页
     ·抗体第22页
     ·实验主要仪器第22-23页
     ·合成引物序列第23页
   ·实验方法第23-40页
     ·重组质粒pAd·sp·E1A_((△24))·E18_((△55))·IL-24 的构建第23-32页
       ·质粒pXC2·sp·E1A_((△24))的构建第27-29页
       ·质粒pAd·sp·E1A_((△24))·E18_((△55))的构建第29页
       ·质粒p Ad·sp·E1A_((△24))·E18_((△55))·IL-24 的构建第29-32页
     ·重组腺病毒的包装、纯化、扩增和滴定第32-36页
       ·重组腺病毒的包装第32页
       ·病毒Ad·sp·E1A_((△24))·E18_((△55))·EGFP和Ad·sp·E1A_((△24))·E18_((△55))·IL-24的纯化第32-33页
       ·重组病毒鉴定第33-34页
       ·重组病毒的大量制备与CsCl 梯度离心纯化病毒第34页
       ·重组病毒的滴度测定第34-36页
     ·溶瘤腺病毒Ad·sp·E1A_((△24))·E18_((△55))·IL-24 体外抗瘤效果评价第36-39页
       ·MTT 法检测肿瘤细胞存活率第36页
       ·结晶紫实验检测Ad·sp·E1A_((△24))·E18_((△55))·IL-24 对肿瘤细胞的毒性第36页
       ·Hoechst 33342 染色观察细胞凋亡第36-37页
       ·Western Blot 实验第37-39页
     ·溶瘤腺病毒Ad·sp·E1A_((△24))·E18_((△55))·IL-24 体内抗瘤效果评价第39-40页
       ·肺癌H460 荷瘤裸鼠模型的建立及瘤内注射第39-40页
     ·统计学分析第40页
   ·实验结果第40-52页
     ·重组质粒的的鉴定第40-42页
       ·质粒pXC2·sp·E1A_((△24))的鉴定第40-41页
       ·质粒 pAd·sp·E1A_((△24))·E1B_((△55))的鉴定第41页
       ·重组质粒 pAd·sp·E1A_((△24))·E1B_((△55))·IL-24 的鉴定第41-42页
     ·重组溶瘤腺病毒的鉴定第42-43页
     ·survivin 启动子高效驱动重组病毒早期基因 E1A 在肿瘤细胞中的表达第43-44页
     ·溶瘤腺病毒Ad·sp·E1A_((△24))·E1B_((△55))·IL-24可在肿瘤细胞中高效表达IL-24蛋白第44-45页
     ·MTT 法检测溶瘤病毒 Ad·sp·E1A_((△24))·E1B_((△55))·IL-24 对肿瘤细胞的体外杀伤效果第45-48页
     ·结晶紫实验分析溶瘤病毒 Ad·sp·E1A_((△24))·E1B_((△55))·IL-24 对肿瘤细胞的毒性第48-49页
     ·凋亡细胞的染色实验第49-50页
     ·Western blot 检测凋亡通路中关键蛋白的表达第50-51页
     ·Ad·sp·E1A_((△24))·E1B_((△55))·IL-24 能有效抑制荷瘤小鼠的肿瘤生长第51-52页
   ·讨论与展望第52-54页
参考文献第54-58页
致谢第58-59页
硕士研究生期间的研究成果第59页

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