| 中文摘要 | 第4-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 缩略词 | 第15-17页 |
| 第1章 前言 | 第17-39页 |
| 1.1 戊型肝炎病毒的分子生物学特征 | 第17-18页 |
| 1.2 HEV 的结构蛋白 | 第18-20页 |
| 1.3 戊肝病毒结构 | 第20-28页 |
| 1.4 HEV 疫苗 | 第28-35页 |
| 1.5 论文设计 | 第35-39页 |
| 第2章 戊型肝炎病毒（HEV）组成和结构的分析 | 第39-61页 |
| 2.1 实验材料 | 第39-41页 |
| 2.1.1 细胞系 | 第39页 |
| 2.1.2 细胞培养所需溶液 | 第39页 |
| 2.1.3 HEV 病毒 | 第39页 |
| 2.1.4 主要材料，试剂和溶液配制 | 第39-41页 |
| 2.2 实验方法 | 第41-47页 |
| 2.2.1 细胞培养 | 第41页 |
| 2.2.2 细胞培养上清中的病毒液的超滤浓缩 | 第41页 |
| 2.2.3 HEV 病毒的纯化 | 第41-42页 |
| 2.2.4 病毒的裂解变性 | 第42页 |
| 2.2.5 变性后 ORF2 蛋白的检测 | 第42-43页 |
| 2.2.6 病毒 RNA 含量的检测 | 第43页 |
| 2.2.7 检测各个超离层的感染性 | 第43-44页 |
| 2.2.8 病毒表面脂膜和 ORF3 蛋白的去除 | 第44页 |
| 2.2.9 不同病毒样品与 PLC/PRF/5 细胞的结合性实验 | 第44页 |
| 2.2.10 亲和层析提取 ORF2 蛋白和 HEV 病毒 | 第44-45页 |
| 2.2.11 用 ORF3 单抗进行的免疫捕获 | 第45页 |
| 2.2.12 提取 ORF2 蛋白的检测 | 第45-46页 |
| 2.2.13 ORF2 蛋白和 HEV RNA 的自组装 | 第46页 |
| 2.2.14 、自组装样品的透射电镜检测 | 第46-47页 |
| 2.3 实验结果 | 第47-54页 |
| 2.4 讨论 | 第54-59页 |
| 2.5 小结 | 第59-61页 |
| 第3章 ORF2 蛋白在昆虫细胞中的表达 | 第61-89页 |
| 3.1 实验材料 | 第61-63页 |
| 3.1.1 细胞系 | 第61页 |
| 3.1.2 细胞培养所需溶液 | 第61页 |
| 3.1.3 主要材料，试剂和溶液配制 | 第61-63页 |
| 3.2 实验方法 | 第63-69页 |
| 3.2.1 细胞培养 | 第63页 |
| 3.2.2 杆状病毒 pfu 检测 | 第63-64页 |
| 3.2.3 VLP 表达参数的优化 | 第64-65页 |
| 3.2.4 蔗糖密度梯度层的制备及 HEV VLP 的初步提取 | 第65页 |
| 3.2.5 HEV VLP 的柱层析纯化 | 第65-66页 |
| 3.2.6 样品分子量检测 | 第66页 |
| 3.2.7 样品的糖染色 | 第66页 |
| 3.2.8 等电点的检测 | 第66-67页 |
| 3.2.9 肽图检测 | 第67页 |
| 3.2.10 样品纯度检测 | 第67页 |
| 3.2.11 样品颗粒性的检测 | 第67-68页 |
| 3.2.12 铝结合率检测 | 第68页 |
| 3.2.13 免疫原性检测 | 第68-69页 |
| 3.3 实验结果 | 第69-85页 |
| 3.3.1 HEV VLPs 表达参数的优化 | 第69-74页 |
| 3.3.2 HEV VLPs 分离纯化工艺摸索 | 第74-76页 |
| 3.3.3 HEV VLPs 评价体系的初步建立 | 第76-85页 |
| 3.4 讨论 | 第85-88页 |
| 3.5 小结 | 第88-89页 |
| 结论 | 第89-91页 |
| 参考文献 | 第91-101页 |
| 个人简历 | 第101-103页 |
| 后记和致谢 | 第103页 |
