| 中文摘要 | 第4-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 英文缩略词 | 第13-14页 |
| 第一章 绪论 | 第14-28页 |
| 1.1 前言 | 第14-16页 |
| 1.2 文献回顾 | 第16-28页 |
| 1.2.1 糖尿病性视网膜病变与视网膜神经节细胞 | 第16-17页 |
| 1.2.2 RGC 细胞凋亡的概念 | 第17页 |
| 1.2.3 RGC 凋亡的机制 | 第17-22页 |
| 1.2.4 Slit-Robo 信号系统在视网膜神经节细胞中的研究进展 | 第22-26页 |
| 1.2.5 展望 | 第26-28页 |
| 第二章 Robo1 和 Robo2 蛋白在糖尿病大鼠视网膜的表达 | 第28-44页 |
| 2.1 材料与方法 | 第28-36页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第28页 |
| 2.1.2 主要试剂与耗材 | 第28-29页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第29-30页 |
| 2.1.4 溶液配制 | 第30-31页 |
| 2.1.5 方法与步骤 | 第31-36页 |
| 2.1.6 统计分析 | 第36页 |
| 2.2 结果 | 第36-39页 |
| 2.2.1 STZ 诱导的糖尿病大鼠模型的建立 | 第36-37页 |
| 2.2.2 Robo1 和 Robo2 蛋白在成年大鼠视网膜组织定位 | 第37-38页 |
| 2.2.3 Robo1 和 Robo2 蛋白在 STZ 诱导的糖尿病大鼠视网膜中水平变化 | 第38-39页 |
| 2.3 讨论 | 第39-44页 |
| 第三章 Robo1 和 Robo2 蛋白在缺氧大鼠神经节细胞中的表达变化 | 第44-58页 |
| 3.1 材料和方法 | 第44-52页 |
| 3.1.1 细胞 | 第44页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第44-45页 |
| 3.1.3 主要仪器 | 第45-46页 |
| 3.1.5 方法与步骤 | 第46-52页 |
| 3.1.6 统计分析 | 第52页 |
| 3.2 结果 | 第52-54页 |
| 3.2.1 缺氧下大鼠 RGC-5 细胞中 Robo1 和 Robo2 的变化 | 第52-54页 |
| 3.3 讨论 | 第54-58页 |
| 第四章 抑制 Slit2、Robo1、Robo2 表达对大鼠视网膜神经细胞凋亡的影响 | 第58-80页 |
| 4.1 材料和方法 | 第58-70页 |
| 4.1.1 细胞 | 第58页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第58-60页 |
| 4.1.3 主要仪器 | 第60页 |
| 4.1.4 溶液配制 | 第60-61页 |
| 4.1.5 步骤和方法 | 第61-70页 |
| 4.2 结果 | 第70-74页 |
| 4.2.1 RNAi 干扰对大鼠视网膜神经节细胞 RGC-5 中 Robo1 表达的影响 | 第70-71页 |
| 4.2.2 RNAi 干扰对大鼠视网膜神经节细胞 RGC-5 中 Robo2 表达的影响 | 第71页 |
| 4.2.3 RNAi 干扰对大鼠视网膜神经节细胞 RGC-5 中 Slit2 表达的影响 | 第71-72页 |
| 4.2.4 抑制 Slit2、Robo1、Robo2 表达对大鼠视网膜神经细胞 RGC-5 凋亡的影响 | 第72-74页 |
| 4.3 讨论 | 第74-80页 |
| 第五章 结论 | 第80-82页 |
| 参考文献 | 第82-96页 |
| 作者简介及攻读博士期间所取得的科研成果 | 第96-97页 |
| 致谢 | 第97页 |
