| 中英文名词对照与缩写 | 第8-9页 |
| 中文摘要 | 第9-19页 |
| 英文摘要 | 第19-27页 |
| 第一部分 肩周炎患者肩关节囊及其周围组织中差异表达分析 | 第28-51页 |
| 1.1 背景 | 第28-41页 |
| 1.1.1 流行病学调查发现发病率高，患者病程迁延 | 第28-29页 |
| 1.1.2 冷冻肩成因：炎症及其相关细胞因子 | 第29-30页 |
| 1.1.3 冷冻肩纤维化及其相关细胞因子 | 第30-33页 |
| 1.1.4 转录组概述 | 第33-35页 |
| 1.1.5 转录组测序 | 第35-38页 |
| 1.1.6 高通量测序平台的选择 | 第38页 |
| 1.1.7 转录组测序的分析方法 | 第38-40页 |
| 1.1.8 本部分的科学假说 | 第40页 |
| 1.1.9 本部分的研究内容 | 第40-41页 |
| 1.2 试剂和耗材 | 第41-42页 |
| 1.2.1 实验试剂 | 第41页 |
| 1.2.2 实验仪器 | 第41页 |
| 1.2.3 实验耗材 | 第41-42页 |
| 1.3 方法 | 第42-46页 |
| 1.3.1 转录组学实验分组及标本处理 | 第42页 |
| 1.3.2 患者纳入标准 | 第42-43页 |
| 1.3.3 关于总RNA提取 | 第43页 |
| 1.3.4 关于去除rRNA | 第43-44页 |
| 1.3.5 关于文库构建 | 第44-46页 |
| 1.4 结果 | 第46-51页 |
| 1.4.1 转录组生物学过程的富集结果 | 第46-47页 |
| 1.4.2 转录组分子功能的富集结果 | 第47-48页 |
| 1.4.3 转录组信号通路的富集结果 | 第48-49页 |
| 1.4.4 转录组蛋白相互作用分析图 | 第49-51页 |
| 第二部分 人成纤维细胞中胶原蛋白/MMP-9/TGF-β的表达及其受PPAR-γ的影响 | 第51-108页 |
| 2.1 背景 | 第51-61页 |
| 2.1.1 冷冻肩纤维化概述 | 第51-53页 |
| 2.1.2 MMP-9与冷冻肩 | 第53-54页 |
| 2.1.3 MMP-9与TGF-β | 第54-55页 |
| 2.1.4 PPAR与TGF-β | 第55-57页 |
| 2.1.5 PPAR-γ概述 | 第57-58页 |
| 2.1.6 本部分的科学假说 | 第58-59页 |
| 2.1.7 本部分的研究内容 | 第59-61页 |
| 2.2 试剂和耗材 | 第61-65页 |
| 2.2.1 实验试剂 | 第61-62页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第62-63页 |
| 2.2.3 实验耗材 | 第63-65页 |
| 2.3 实验方法 | 第65-77页 |
| 2.3.1 实验分组 | 第65-67页 |
| 2.3.2 人成纤维细胞复苏 | 第67页 |
| 2.3.3 人成纤维细胞传代 | 第67页 |
| 2.3.4 人成纤维细胞计数 | 第67-68页 |
| 2.3.5 人成纤维细胞病毒预感染实验 | 第68-69页 |
| 2.3.6 人成纤维细胞PPAR-γ预处理实验 | 第69页 |
| 2.3.7 人成纤维细胞RNA提取 | 第69-70页 |
| 2.3.8 测定提取后RNA纯度操作 | 第70页 |
| 2.3.9 测定RNA浓度操作 | 第70-71页 |
| 2.3.10 基因组DNA的去除 | 第71页 |
| 2.3.11 反转录体系 | 第71-72页 |
| 2.3.12 实时定量PCR引物设计 | 第72-73页 |
| 2.3.13 实时定量PCR体系 | 第73页 |
| 2.3.14 实时定量PCR扩增程序 | 第73页 |
| 2.3.15 实时定量PCR数据说明 | 第73-74页 |
| 2.3.16 蛋白质表达的Western blot检测 | 第74-75页 |
| 2.3.17 统计学分析 | 第75-76页 |
| 2.3.18 实验流程图 | 第76-77页 |
| 2.4 结果 | 第77-108页 |
| 2.4.1 慢病毒感染细胞培养结果 | 第77-78页 |
| 2.4.2 HFF细胞中PPAR激动及抑制浓度测定 | 第78-85页 |
| 2.4.3 HSF细胞中PPAR激动及抑制浓度测定 | 第85-89页 |
| 2.4.4 体外实验各组蛋白免疫印迹结果 | 第89-93页 |
| 2.4.5 体外实验各组实时定量PCR结果 | 第93-108页 |
| 第三部分 实验动物肩关节中胶原蛋白/MMP-9/TGF-β的表达及其受PPAR-γ的影响 | 第108-129页 |
| 3.1 背景 | 第108-111页 |
| 3.1.1 实验动物与MMP-9 | 第108页 |
| 3.1.2 实验动物与PPAR-γ | 第108页 |
| 3.1.3 实验动物与TGF-β | 第108-109页 |
| 3.1.4 吡格列酮(噻唑烷二酮类) | 第109页 |
| 3.1.5 本部分的科学假说 | 第109页 |
| 3.1.6 本部分的研究内容 | 第109-111页 |
| 3.2 试剂和耗材 | 第111-114页 |
| 3.2.1 实验试剂 | 第111页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第111-112页 |
| 3.2.3 实验耗材 | 第112-114页 |
| 3.3 实验方法 | 第114-123页 |
| 3.3.1 实验动物的分组 | 第114页 |
| 3.3.2 实验动物的麻醉 | 第114-116页 |
| 3.3.3 动物大体解剖观察 | 第116-117页 |
| 3.3.4 动物肩关节病毒注射 | 第117页 |
| 3.3.5 动物血药浓度测定 | 第117-119页 |
| 3.3.6 实验动物肩关节活动度检测 | 第119页 |
| 3.3.7 肩关节囊切片HE染色 | 第119-121页 |
| 3.3.8 肩关节囊切片免疫组织化学染色 | 第121-122页 |
| 3.3.9 Western blot检测 | 第122-123页 |
| 3.4 结果 | 第123-129页 |
| 3.4.1 血药浓度测定结果 | 第123-124页 |
| 3.4.2 实验动物肩关节活动度检测 | 第124页 |
| 3.4.3 肩关节囊HE染色结果 | 第124-125页 |
| 3.4.4 肩关节囊免疫组化结果 | 第125-127页 |
| 3.4.5 蛋白免疫印迹结果 | 第127-129页 |
| 讨论 | 第129-145页 |
| 4.1 冷冻肩发病率高，患者病程迁延 | 第129-130页 |
| 4.2 冷冻肩涉及多种炎症及其相关细胞因子 | 第130-131页 |
| 4.3 肩关节纤维化为临床症状主要因素 | 第131-134页 |
| 4.4 冷冻肩纤维化涉及PPAR-γ、MMP-9以及TGF-β | 第134-136页 |
| 4.5 TGF-β以及MMP-9影响胶原蛋白代谢 | 第136-137页 |
| 4.6 PPAR-γ与TGF-β以及MMP-9间的相互影响 | 第137-142页 |
| 4.7 胶原蛋白代谢与PPAR-γ/TGF-β以及MMP-9的关系 | 第142-144页 |
| 4.8 本课题冷冻肩相关研究结论 | 第144-145页 |
| 参考文献 | 第145-150页 |
| 综述 | 第150-164页 |
| References | 第159-164页 |
| 发表论文 | 第164-166页 |
| 专利授权 | 第166页 |
| 专利申请 | 第166-168页 |
| 致谢 | 第168-169页 |
