| 常用缩写词中英文对照表 | 第6-7页 |
| 中文摘要 | 第7-10页 |
| ABSTRACT | 第10-13页 |
| 前言 | 第14-24页 |
| 第一部分 变异羊种布鲁氏菌细胞内生存能力的比较 | 第24-37页 |
| 1 实验材料 | 第24页 |
| 1.1 菌株和细胞 | 第24页 |
| 1.2 主要仪器 | 第24页 |
| 1.3 主要试剂 | 第24页 |
| 2 实验方法 | 第24-29页 |
| 2.1 布鲁氏菌的培养及鉴定 | 第24-26页 |
| 2.2 布鲁氏菌侵染RAW264.7细胞模型建立 | 第26-27页 |
| 2.3 ELISA方法检测细胞因子IL-1β、IL-6及IL-12 | 第27-28页 |
| 2.4 菌落计数 | 第28页 |
| 2.5 统计分析 | 第28-29页 |
| 3 结果 | 第29-33页 |
| 3.1 四株变异布鲁氏菌变异情况的检测结果 | 第29页 |
| 3.2 炎症因子IL-1β、IL-6及IL-12的检测 | 第29-30页 |
| 3.3 布鲁氏菌16M和M5在细胞内的存活及增殖情况 | 第30-31页 |
| 3.4 不同菌株侵染RAW264.7细胞的比较 | 第31-33页 |
| 4 讨论 | 第33-36页 |
| 5 小结 | 第36-37页 |
| 第二部分 四株变异菌株脂多糖特点及遗传学差异的比较 | 第37-57页 |
| 1 实验材料 | 第37页 |
| 1.1 菌株 | 第37页 |
| 1.2 实验器材 | 第37页 |
| 1.3 实验试剂 | 第37页 |
| 2 试验方法 | 第37-47页 |
| 2.1 布鲁氏菌培养及鉴定 | 第37页 |
| 2.2 酚水法提取布鲁氏菌脂多糖 | 第37-38页 |
| 2.3 试剂盒法提取LPS | 第38-39页 |
| 2.4 聚丙烯酰胺凝胶(SDS-PAGE)电泳 | 第39-40页 |
| 2.5 银染 | 第40-41页 |
| 2.6 ELISA法检测脂多糖浓度 | 第41-42页 |
| 2.7 鲎试剂法检测脂多糖活性 | 第42-43页 |
| 2.8 核酸提取 | 第43-44页 |
| 2.9 细菌基因组框架测序 | 第44-45页 |
| 2.10 脂多糖合成相关基因的比较 | 第45-47页 |
| 3 结果 | 第47-50页 |
| 3.1 两种方法提取的脂多糖银染结果 | 第47页 |
| 3.2 两种方法提取的脂多糖活性的比较 | 第47-48页 |
| 3.3 两种方法提取脂多糖操作过程的比较 | 第48页 |
| 3.4 各菌株脂多糖银染结果 | 第48-49页 |
| 3.5 各变异菌株LPS合成基因变异情况 | 第49-50页 |
| 4 讨论 | 第50-56页 |
| 5 小结 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-61页 |
| 综述 布鲁氏菌脂多糖毒力研究现状 | 第61-69页 |
| 参考文献 | 第66-69页 |
| 作者简介 | 第69页 |
| 研究生期间发表论文 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70页 |
