| 摘要 | 第2-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 缩略词表（Abbreviation） | 第6-11页 |
| 1 前言 | 第11-18页 |
| 1.1 研究背景 | 第11-17页 |
| 1.1.1“紫娟”的基本介绍 | 第11-12页 |
| 1.1.2 花青素及其功能 | 第12页 |
| 1.1.3 花青素的生物合成 | 第12-13页 |
| 1.1.4 调控花青素合成的转录因子 | 第13-14页 |
| 1.1.5 影响花青素含量的因素 | 第14-15页 |
| 1.1.6 茶树花青素的相关研究 | 第15-16页 |
| 1.1.7 表观遗传修饰 | 第16-17页 |
| 1.2 研究目的意义及技术路线 | 第17-18页 |
| 1.2.1 研究意义 | 第17页 |
| 1.2.2 研究的技术路线 | 第17-18页 |
| 2 材料与方法 | 第18-24页 |
| 2.1 实验材料 | 第18-19页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第18页 |
| 2.1.2 载体 | 第18页 |
| 2.1.3 菌株 | 第18-19页 |
| 2.2 实验方法 | 第19-24页 |
| 2.2.1 RNA的提取 | 第19页 |
| 2.2.2 cDNA文库的构建及转录组测序 | 第19页 |
| 2.2.3 转录组生物信息学分析 | 第19页 |
| 2.2.4 cDNA第一链的合成 | 第19-20页 |
| 2.2.5 连接产物转化大肠杆菌感受态 | 第20页 |
| 2.2.6 农杆菌感受态的制备 | 第20-21页 |
| 2.2.7 重组质粒转化农杆菌感受态细胞 | 第21页 |
| 2.2.8 qRT-PCR分析 | 第21页 |
| 2.2.9 亚细胞定位 | 第21-22页 |
| 2.2.10 CsAN1启动子克隆及元件分析 | 第22页 |
| 2.2.11 酵母感受态制备 | 第22页 |
| 2.2.12 酵母单杂交 | 第22-23页 |
| 2.2.13 酵母双杂交 | 第23页 |
| 2.2.14 双分子荧光互补（BiFC） | 第23页 |
| 2.2.15 甲基化分析 | 第23页 |
| 2.2.16 花青素测定 | 第23-24页 |
| 3 结果与分析 | 第24-47页 |
| 3.1 “紫娟”及其他12个茶树品种的花青素分析 | 第24-26页 |
| 3.2 生物信息学分析与花青素合成相关的基因及转录因子的筛选 | 第26-29页 |
| 3.3 转录因子克隆基序列比对 | 第29-32页 |
| 3.3.1 CsAN1克隆和序列比对 | 第29-30页 |
| 3.3.2 bHLH转录因子克隆和序列比对 | 第30-31页 |
| 3.3.3 WD40重复蛋白克隆和序列比对 | 第31-32页 |
| 3.4 转录因子的进化树分析 | 第32-33页 |
| 3.5 CsAN1、CsGL3、CsEGL3和CsTTG1的亚细胞定位 | 第33-35页 |
| 3.6 CsAN1的转录激活分析 | 第35-36页 |
| 3.7 CsAN1能结合CsLDOX1和Cs LDOX2的启动子 | 第36-37页 |
| 3.8 MBW复合物调控Cs LDOX2启动子转录活性 | 第37-39页 |
| 3.9 CsAN1是MBW复合物的成员 | 第39-41页 |
| 3.10 烟草瞬时超表达实验 | 第41-42页 |
| 3.11 CsAN1 启动子甲基化水平与花青素含量相关 | 第42-44页 |
| 3.12 光照和温度对花青素含量的影响 | 第44-47页 |
| 4 讨论 | 第47-50页 |
| 4.1 “紫娟”高花青素积累的分子机制 | 第47页 |
| 4.2 CsTTG1细胞的定位模式 | 第47-48页 |
| 4.3 CsAN1的表观遗传调控 | 第48-49页 |
| 4.4 影响花青素生物合成的环境因素 | 第49-50页 |
| 5 结论 | 第50-51页 |
| 致谢 | 第51-53页 |
| 参考文献 | 第53-59页 |
| 附录A | 第59-63页 |
| 附录B | 第63-64页 |
| 附录C 硕士期间发表论文 | 第64页 |
