| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 文献综述 | 第9-20页 |
| 1.1 植物花药开裂研究进展 | 第9-12页 |
| 1.1.1 植物花药开裂的细胞生物学机制 | 第9-10页 |
| 1.1.2 植物花药开裂的分子调控机制 | 第10-12页 |
| 1.2 蛋白质组研究概述 | 第12-18页 |
| 1.2.1 蛋白质组的概念及发展史 | 第12页 |
| 1.2.2 蛋白组学研究相关技术 | 第12-16页 |
| 1.2.3 蛋白组学在植物雄性不育方面的研究 | 第16-17页 |
| 1.2.4 茄子雄性不育差异蛋白质组学研究 | 第17-18页 |
| 1.3 茉莉酸信号转导途径相关基因的研究进展 | 第18-20页 |
| 第二章 引言 | 第20-22页 |
| 本试验采用技术路线如下 | 第21-22页 |
| 第三章 基于双向电泳的茄子花药开裂相关蛋白的鉴定 | 第22-35页 |
| 3.1 材料与方法 | 第22-28页 |
| 3.1.1 材料 | 第22页 |
| 3.1.2 方法 | 第22-28页 |
| 3.1.2.1 茄子花药总蛋白的提取 | 第22页 |
| 3.1.2.2 茄子花药总蛋白的纯化 | 第22-23页 |
| 3.1.2.3 茄子花药总蛋白的定量 | 第23页 |
| 3.1.2.4 茄子花药总蛋白的双向电泳 | 第23-27页 |
| 3.1.2.5 硝酸银染色方法 | 第27页 |
| 3.1.2.6 2-DE凝胶蛋白差异点分析 | 第27-28页 |
| 3.2 结果与分析 | 第28-32页 |
| 3.2.1 花药蛋白浓度定量 | 第28页 |
| 3.2.2 花药蛋白的双向电泳检测及质谱鉴定分析 | 第28-32页 |
| 3.2.2.1 花药蛋白双向电泳图谱比较 | 第28-29页 |
| 3.2.2.2 茄子花药差异表达蛋白点的质谱鉴定 | 第29-32页 |
| 3.3 讨论 | 第32-35页 |
| 第四章 茄子JA信号转导途径相关基因的克隆与分析 | 第35-55页 |
| 4.1 材料与方法 | 第35-42页 |
| 4.1.1 材料 | 第35-36页 |
| 4.1.2 方法 | 第36-42页 |
| 4.1.2.1 取材方法 | 第36页 |
| 4.1.2.2 茄子花药总RNA提取 | 第36-37页 |
| 4.1.2.3 茄子花药RNA的纯度和浓度检测 | 第37页 |
| 4.1.2.4 茄子第一链cDNA的获得 | 第37页 |
| 4.1.2.5 茄子JA信号转导途径相关基因的ORF区扩增 | 第37-39页 |
| 4.1.2.6 目的基因片段的回收 | 第39-40页 |
| 4.1.2.7 目的片段克隆载体的连接、转化及鉴定 | 第40-41页 |
| 4.1.2.8 茄子JA信号转导途径相关基因的序列分析 | 第41-42页 |
| 4.2 结果与分析 | 第42-53页 |
| 4.2.1 茄子花药总RNA提取纯度检测 | 第42页 |
| 4.2.2 茄子JA信号转导途径相关基因的ORF区克隆结果 | 第42-43页 |
| 4.2.3 茄子COI1、JAZ1、MYC2基因的生物信息学分析 | 第43-53页 |
| 4.2.3.1 COI1基因的编码蛋白的生物信息学分析 | 第43-47页 |
| 4.2.3.2 JAZ1基因的编码蛋白的生物信息学分析 | 第47-50页 |
| 4.2.3.3 MYC2基因的编码蛋白的生物信息学分析 | 第50-53页 |
| 4.3 讨论 | 第53-55页 |
| 第五章 茄子JA信号转导途径相关基因的表达分析 | 第55-62页 |
| 5.1 材料与方法 | 第55-57页 |
| 5.1.1 材料 | 第55页 |
| 5.1.2 方法 | 第55-57页 |
| 5.2 结果与分析 | 第57-59页 |
| 5.2.1 茄子花药总RNA的提取及纯度检测 | 第57页 |
| 5.2.2 茄子JA信号转导途径相关基因在茄子花药不同时期的表达分析 | 第57-59页 |
| 5.2.2.1 茄子COI1基因的定量表达分析 | 第57-58页 |
| 5.2.2.2 茄子JAZ1基因的定量表达分析 | 第58-59页 |
| 5.2.2.3 茄子MYC2基因的定量表达分析 | 第59页 |
| 5.3 讨论 | 第59-62页 |
| 第六章 结论 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-73页 |
| 附录 | 第73-74页 |
| 致谢 | 第74-75页 |
| 在学期间发表论文 | 第75-76页 |
| 在学期间参加的科研项目 | 第76页 |
