摘要 | 第7-9页 |
Abstract | 第9-10页 |
第1章 综述 | 第11-23页 |
1.1 荧光碳量子点的概述 | 第11页 |
1.2 荧光碳量子点的研究进展 | 第11-20页 |
1.2.1 荧光碳量子点的合成方法 | 第12-17页 |
1.2.2 荧光碳量子点的性质 | 第17页 |
1.2.3 荧光碳量子点的应用 | 第17-20页 |
1.3 本课题的立题依据、意义和研究内容 | 第20-21页 |
1.3.1 立题依据与意义 | 第20页 |
1.3.2 研究内容 | 第20-21页 |
1.4 本论文的创新点 | 第21-23页 |
第2章 实验方法 | 第23-29页 |
2.1 试剂 | 第23-24页 |
2.2 合成方法及所用仪器 | 第24页 |
2.2.1 水热法 | 第24页 |
2.3 材料表征及所用仪器 | 第24-26页 |
2.3.1 透射电子显微镜 | 第24页 |
2.3.2 傅里叶变换红外光谱仪 | 第24-25页 |
2.3.3 X射线光电子能谱仪 | 第25页 |
2.3.4 Zeta电位仪 | 第25页 |
2.3.5 紫外可见分光光度计 | 第25-26页 |
2.3.6 荧光分光光度计 | 第26页 |
2.3.7 荧光倒置显微镜 | 第26页 |
2.4 相关材料的制备方法 | 第26-29页 |
2.4.1 碳量子点的制备 | 第26-27页 |
2.4.2 金纳米颗粒的制备 | 第27页 |
2.4.3 DNA修饰AuNPs | 第27页 |
2.4.4 细胞的培养 | 第27-29页 |
第3章 N,S共掺杂的碳量子点的合成及其应用 | 第29-41页 |
3.1 引言 | 第29-30页 |
3.2 实验过程 | 第30-31页 |
3.2.1 N,S-CDs的合成 | 第30页 |
3.2.2 荧光量子产率的测定 | 第30页 |
3.2.3 Fe~(3+)的测定 | 第30页 |
3.2.4 环境中Fe~(3+)的分析 | 第30-31页 |
3.2.5 细胞成像 | 第31页 |
3.3 结果与讨论 | 第31-40页 |
3.3.1 N,S-CDs的合成与表征 | 第31-33页 |
3.3.2 光学性质 | 第33-34页 |
3.3.3 N,S-CDs对Fe~(3+)的荧光响应 | 第34-36页 |
3.3.4 Fe~(3+)的荧光传感检测 | 第36-40页 |
3.4 本章小结 | 第40-41页 |
第4章 适配子诱导的碳量子点与AuNPs的组装结构检测毒素 | 第41-57页 |
4.1 引言 | 第41-42页 |
4.2 实验部分 | 第42-43页 |
4.2.1 N-CDs和AuNPs的合成 | 第42-43页 |
4.2.2 适配子修饰AuNPs | 第43页 |
4.2.3 AFB1的检测过程 | 第43页 |
4.2.4 花生和玉米样品分析 | 第43页 |
4.3 结果与讨论 | 第43-55页 |
4.3.1 检测原理 | 第43-44页 |
4.3.2 N-CDs和AuNPs的合成与表征 | 第44-48页 |
4.3.3 碳量子点对荧光恢复的影响 | 第48-50页 |
4.3.4 实验条件的优化 | 第50-51页 |
4.3.5 AFB1的定量检测 | 第51-53页 |
4.3.6 花生和玉米中AFB_1的测定 | 第53-54页 |
4.3.7 OTA的定量检测 | 第54-55页 |
4.4 本章小结 | 第55-57页 |
第5章 Fe-CDs的合成及其在多巴胺检测中的应用 | 第57-67页 |
5.1 引言 | 第57-58页 |
5.2 实验部分 | 第58页 |
5.2.1 Fe-CDs的合成 | 第58页 |
5.2.2 荧光量子产率的计算 | 第58页 |
5.2.3 多巴胺的检测 | 第58页 |
5.3 结果与讨论 | 第58-65页 |
5.3.1 Fe-CDs的表征 | 第58-60页 |
5.3.2 Fe-CDs的光学性质 | 第60页 |
5.3.3 Fe-CDs的过氧化物酶的催化活性 | 第60-62页 |
5.3.4 多巴胺的比色检测 | 第62-63页 |
5.3.5 多巴胺检测的选择性 | 第63页 |
5.3.6 多巴胺的荧光检测 | 第63-65页 |
5.3.7 人血清中多巴胺的检测 | 第65页 |
5.4 本章小结 | 第65-67页 |
第6章 结论与展望 | 第67-69页 |
6.1 结论 | 第67页 |
6.2 展望 | 第67-69页 |
参考文献 | 第69-85页 |
致谢 | 第85-87页 |
攻读硕士学位期间科研情况 | 第87页 |