摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
第一章 文献综述 | 第11-24页 |
1.1 引言 | 第11页 |
1.2 植物CMS基因和恢复基因的研究进展 | 第11-13页 |
1.2.1 植物CMS基因的鉴定和序列特征 | 第11-13页 |
1.2.2 恢复基因的鉴定和序列特征 | 第13页 |
1.3 植物CMS基因引起雄性不育的分子机理 | 第13-16页 |
1.3.1 毒蛋白模型 | 第14页 |
1.3.2 能量供应不足模型 | 第14-15页 |
1.3.3 异常程序性死亡模型 | 第15-16页 |
1.3.4 线粒体逆向信号调节模型 | 第16页 |
1.4 植物CMS的育性恢复机理 | 第16-19页 |
1.4.1 基因组水平 | 第16页 |
1.4.2 转录后水平 | 第16-18页 |
1.4.3 翻译或翻译后水平 | 第18-19页 |
1.4.4 代谢水平 | 第19页 |
1.5 拟南芥中Rf-PPR-like基因的研究进展 | 第19页 |
1.6 Pol CMS/Rf系统的研究 | 第19-21页 |
1.6.1 Pol CMS的不育基因和不育机理 | 第19-20页 |
1.6.2 Pol CMS的恢复基因和恢复机理 | 第20-21页 |
1.7 本课题组对大白菜pol CMS/Rf系统的研究进展 | 第21-22页 |
1.8 本研究的目的和意义 | 第22-23页 |
1.9 本研究的技术路线 | 第23-24页 |
第二章 大白菜pol CMS不同恢复系恢复基因的等位性分析 | 第24-28页 |
2.1 材料与方法 | 第24-26页 |
2.1.1 植物材料 | 第24页 |
2.1.2 方法 | 第24-26页 |
2.2 结果分析 | 第26页 |
2.3 讨论 | 第26-28页 |
第三章 大白菜pol CMS的育性恢复基因BrRfp1的图位克隆 | 第28-40页 |
3.1 材料与方法 | 第28-29页 |
3.1.1 植物材料 | 第28页 |
3.1.2 亲本基因组重测序 | 第28页 |
3.1.3 SSR标记和In Del标记的开发 | 第28-29页 |
3.1.4 基因组DNA的提取、PCR和电泳分析 | 第29页 |
3.1.5 遗传图谱、物理图谱的构建和候选基因的确定 | 第29页 |
3.1.6 候选基因的克隆和序列分析 | 第29页 |
3.2 结果分析 | 第29-35页 |
3.2.1 恢复基因遗传规律的分析和初步定位 | 第29-31页 |
3.2.2 全基因组重测序 | 第31-32页 |
3.2.3 基于基因组重测序的精细定位 | 第32-33页 |
3.2.4 大白菜BrRfp1候选基因的克隆和序列分析 | 第33-35页 |
3.2.5 大白菜恢复基因共分离分子标记的开发和验证 | 第35页 |
3.3 讨论 | 第35-40页 |
第四章 大白菜pol CMS不同恢复基因位点恢复机理研究 | 第40-54页 |
4.1 材料与方法 | 第40-45页 |
4.1.1 植物材料 | 第40页 |
4.1.2 石蜡切片的制作和观察 | 第40-42页 |
4.1.3 总RNA的提取 | 第42页 |
4.1.4 环化RT-PCR | 第42-43页 |
4.1.5 RT-qPCR | 第43页 |
4.1.6 线粒体的纯化和线粒体蛋白的提取 | 第43页 |
4.1.7 线粒体蛋白定量 | 第43-44页 |
4.1.8 抗体制备 | 第44页 |
4.1.9 Western杂交 | 第44-45页 |
4.2 结果与分析 | 第45-50页 |
4.2.1 不同大小全不育、半恢复和全恢复花蕾的石蜡切片观察 | 第45页 |
4.2.2 全不育、半恢复和全恢复花蕾中orf224-atp6转录本的差异 | 第45-48页 |
4.2.3 orf224和atp6基因在不同大小的全不育、半恢复和全恢复花蕾中的定量分析 | 第48-49页 |
4.2.4 ORF224蛋白在全不育、半恢复和全恢复花蕾中的Western blot检测 | 第49-50页 |
4.3 讨论 | 第50-54页 |
第五章 结论、创新点和展望 | 第54-57页 |
5.1 结论 | 第54-55页 |
5.2 创新点 | 第55页 |
5.3 展望 | 第55-57页 |
参考文献 | 第57-66页 |
附录 | 第66-75页 |
缩略词 | 第75-77页 |
致谢 | 第77-78页 |
作者简介 | 第78页 |