| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-22页 |
| 1.1 斑马鱼的胰腺发育 | 第12-16页 |
| 1.1.1 斑马鱼胰腺结构及形态发生 | 第12-13页 |
| 1.1.2 参与胰腺发生的信号通路 | 第13-15页 |
| 1.1.3 斑马鱼胰腺细胞的分化 | 第15-16页 |
| 1.1.4 胰腺疾病 | 第16页 |
| 1.2 斑马鱼的心脏发育 | 第16-21页 |
| 1.2.1 心脏细胞的特化及迁移 | 第16-18页 |
| 1.2.2 心肌管的延伸及环化 | 第18页 |
| 1.2.3 心脏中瓣膜的形成 | 第18-19页 |
| 1.2.4 心肌细胞的重塑 | 第19页 |
| 1.2.5 血管形成方式 | 第19-21页 |
| 1.3 研究目的 | 第21-22页 |
| 第二章 材料与方法 | 第22-42页 |
| 2.1 斑马鱼及其饲养 | 第22页 |
| 2.2 实验仪器、试剂、材料 | 第22-27页 |
| 2.2.1 实验仪器 | 第22-24页 |
| 2.2.2 实验试剂 | 第24-25页 |
| 2.2.3 实验材料 | 第25-27页 |
| 2.3 实验方法 | 第27-42页 |
| 2.3.1 斑马鱼基因组DNA的提取（NaOH法） | 第27页 |
| 2.3.2 斑马鱼基因组DNA的提取（NP40法） | 第27页 |
| 2.3.3 斑马鱼基因组DNA的提取（SDS法） | 第27-28页 |
| 2.3.4 斑马鱼RNA提取 | 第28页 |
| 2.3.5 Taq DNA聚合酶制备 | 第28-29页 |
| 2.3.6 DH5α感受态细胞制备及转化 | 第29-30页 |
| 2.3.7 PCR | 第30-31页 |
| 2.3.8 PCR产物清洁 | 第31-32页 |
| 2.3.9 DNA琼脂糖凝胶电泳及切胶回收 | 第32页 |
| 2.3.10 质粒克隆 | 第32-33页 |
| 2.3.11 大肠杆菌中质粒提取 | 第33页 |
| 2.3.12 cDNA制备 | 第33-34页 |
| 2.3.13 RNA探针制备 | 第34-35页 |
| 2.3.14 mRNA制备 | 第35-36页 |
| 2.3.15 显微注射 | 第36页 |
| 2.3.16 全胚原位杂交（WISH） | 第36-38页 |
| 2.3.17 免疫组化（IHC） | 第38-39页 |
| 2.3.18 冰冻切片 | 第39-40页 |
| 2.3.19 药物处理 | 第40-42页 |
| 第三章 实验结果 | 第42-52页 |
| 3.1 前言 | 第42-43页 |
| 3.2 实验结果 | 第43-52页 |
| 3.2.1 gata6突变体的获得及初步消化器官表型分析 | 第43-44页 |
| 3.2.2 gata6突变体中腹侧胰芽发育缺陷 | 第44-45页 |
| 3.2.3 gata6突变体中LPM迁移情况 | 第45页 |
| 3.2.4 gata6突变体中Hedgehog信号异常表达 | 第45-46页 |
| 3.2.5 gata6突变体中心脏流出道发育缺陷 | 第46-48页 |
| 3.2.6 gata6突变体中gata5的补偿效应 | 第48-50页 |
| 3.2.7 心脏流出道中空腔形成方式探究 | 第50-52页 |
| 第四章 总结与讨论 | 第52-54页 |
| 4.1 总结 | 第52页 |
| 4.2 讨论 | 第52-54页 |
| 4.2.1 斑马鱼腹侧胰芽发育 | 第52-53页 |
| 4.2.2 gata6调控心脏流出道形成 | 第53页 |
| 4.2.3 研究的新颖性及意义 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-60页 |
| 致谢 | 第60-62页 |
| 在读期间发表论文及参与课题 | 第62页 |
