| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTARCT | 第7-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-29页 |
| 1.1 植物细胞壁 | 第15-21页 |
| 1.1.1 植物细胞壁的组成 | 第15-16页 |
| 1.1.2 初生壁（primary cell wall） | 第16-19页 |
| 1.1.3 初生壁的生物构建 （architecture） | 第19-20页 |
| 1.1.4 初生壁的生物合成（biochemical synthesis） | 第20-21页 |
| 1.2 细胞壁体外模型 | 第21页 |
| 1.3 细菌纤维素 | 第21-26页 |
| 1.3.1 细菌纤维素的特点 | 第21-24页 |
| 1.3.2 细菌纤维素的生物合成 | 第24-26页 |
| 1.3.3 细菌纤维素的应用 | 第26页 |
| 1.4 选题依据和研究内容 | 第26-29页 |
| 第二章 细菌纤维素与中性多聚糖的体外结合 | 第29-46页 |
| 2.1 试验材料与设备 | 第29-31页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第29页 |
| 2.1.2 试验试剂 | 第29-30页 |
| 2.1.3 试验设备 | 第30-31页 |
| 2.2 试验方法 | 第31-34页 |
| 2.2.1 纤维素产生菌活化 | 第31-32页 |
| 2.2.2 体外结合试验（binding assay） | 第32-34页 |
| 2.2.3 体外解离试验（de-binding assay） | 第34页 |
| 2.3 结果与分析 | 第34-44页 |
| 2.3.1 体外结合试验 | 第34-41页 |
| 2.3.2 体外解离试验 | 第41-44页 |
| 2.4 讨论 | 第44-45页 |
| 2.5 结论 | 第45-46页 |
| 第三章 细菌纤维素与果胶的体外结合 | 第46-64页 |
| 3.1 试验材料与设备 | 第46-48页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第46页 |
| 3.1.2 试验试剂 | 第46-48页 |
| 3.1.3 试验设备 | 第48页 |
| 3.2 试验方法 | 第48-51页 |
| 3.2.1 纤维素产生菌活化 | 第48页 |
| 3.2.2 体外结合试验（binding assay） | 第48-50页 |
| 3.2.3 体外解离试验（de-binding assay） | 第50-51页 |
| 3.3 结果与分析 | 第51-62页 |
| 3.3.1 GC-MS测定分析 | 第51-53页 |
| 3.3.2 荧光免疫标记 | 第53-54页 |
| 3.3.3 钌红染色 | 第54-56页 |
| 3.3.4 复合膜的超微观结构 | 第56-58页 |
| 3.3.5 复合膜的超分子结构 | 第58-59页 |
| 3.3.6 体外解离试验 | 第59-62页 |
| 3.4 讨论 | 第62-63页 |
| 3.5 结论 | 第63-64页 |
| 第四章 细菌纤维素与阿拉伯半乳聚糖的体外结合 | 第64-75页 |
| 4.1 试验材料与设备 | 第64-66页 |
| 4.1.1 试验材料 | 第64页 |
| 4.1.2 试验试剂 | 第64-65页 |
| 4.1.3 试验设备 | 第65-66页 |
| 4.2 试验方法 | 第66-67页 |
| 4.2.1 纤维素产生菌活化 | 第66页 |
| 4.2.2 体外结合试验（binding assay） | 第66-67页 |
| 4.2.3 体外解离试验（de-binding assay） | 第67页 |
| 4.3 结果与分析 | 第67-74页 |
| 4.3.1 GC-MS测定分析 | 第67-69页 |
| 4.3.2 β-Yariv染色 | 第69-70页 |
| 4.3.3 复合膜的超微观结构 | 第70页 |
| 4.3.4 复合膜的超分子结构 | 第70-72页 |
| 4.3.5 体外解离试验 | 第72-74页 |
| 4.4 讨论 | 第74页 |
| 4.5 结论 | 第74-75页 |
| 第五章 利用QCM-D研究壁多糖与纤维素的结合作用 | 第75-85页 |
| 5.1 试验材料与设备 | 第75-76页 |
| 5.1.1 试验材料 | 第75-76页 |
| 5.1.2 试验设备 | 第76页 |
| 5.2 试验方法 | 第76页 |
| 5.2.1 多聚糖溶液的配备 | 第76页 |
| 5.2.2 QCM-D E4操作过程 | 第76页 |
| 5.2.3 多聚糖溶液粘度测定 | 第76页 |
| 5.3 结果与分析 | 第76-83页 |
| 5.3.1 模型拟合 | 第76-79页 |
| 5.3.2 频率变化比较 | 第79-80页 |
| 5.3.3 膜表面能量损耗比较 | 第80-82页 |
| 5.3.4 多聚糖溶液粘度 | 第82-83页 |
| 5.4 讨论 | 第83页 |
| 5.5 结论 | 第83-85页 |
| 第六章 细菌纤维素复合膜的机械特性 | 第85-102页 |
| 6.1 试验材料与设备 | 第85-87页 |
| 6.1.1 试验材料 | 第85-86页 |
| 6.1.2 试验试剂 | 第86页 |
| 6.1.3 试验设备 | 第86-87页 |
| 6.2 试验方法 | 第87-88页 |
| 6.2.1 纤维素产生菌活化 | 第87页 |
| 6.2.2 细菌纤维素/多聚糖复合膜制备 | 第87页 |
| 6.2.3 机械压力测试（compression testing） | 第87-88页 |
| 6.3 结果与分析 | 第88-100页 |
| 6.3.1 泊松比（Poisson’s Ratio） | 第88-89页 |
| 6.3.2 纤维素膜受压变化 | 第89-95页 |
| 6.3.3 纤维素膜的G′和G″ | 第95-98页 |
| 6.3.4 复合膜中多聚糖与压力关系 | 第98-100页 |
| 6.4 讨论 | 第100-101页 |
| 6.5 结论 | 第101-102页 |
| 第七章 结论、创新点与展望 | 第102-106页 |
| 7.1 结论 | 第102-103页 |
| 7.1.1 细菌纤维素与中性糖的体外结合 | 第102页 |
| 7.1.2 细菌纤维素与5种不同来源果胶的体外结合 | 第102页 |
| 7.1.3 细菌纤维素与2种阿拉伯半乳聚糖的体外结合 | 第102-103页 |
| 7.1.4 利用石英晶体微量天平分析研究纤维素与壁多糖的结合作用 | 第103页 |
| 7.1.5 利用流变仪测定分析细菌纤维素复合膜的机械特性 | 第103页 |
| 7.2 创新点 | 第103页 |
| 7.3 展望 | 第103-106页 |
| 7.3.1 建立多元壁多糖与细菌纤维素结合的体外模型 | 第104页 |
| 7.3.2 研究Ca~(2+)存在条件下的体外模型 | 第104页 |
| 7.3.3 比较从植物细胞壁中提取的纤维素和细菌纤维素与壁多糖的体外结合 | 第104-105页 |
| 7.3.4 研究球状细菌纤维素与壁多糖的体外结合 | 第105-106页 |
| 参考文献 | 第106-122页 |
| 缩略词 | 第122-123页 |
| 致谢 | 第123-124页 |
| 作者简介 | 第124页 |
