| 摘要 | 第2-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 第一章 临床胶质瘤样本中HCMV感染对ATF5甲基化水平及表达的影响 | 第10-45页 |
| 引言 | 第14-15页 |
| 1.材料和方法 | 第15-26页 |
| 1.1 主要实验仪器设备 | 第15页 |
| 1.2 主要实验试剂及配制 | 第15-17页 |
| 1.3 标本采集和临床资料汇总 | 第17页 |
| 1.4 RT-PCR | 第17-19页 |
| 1.5 ATF5启动子区CpG岛的预测及甲基化引物的合成 | 第19-20页 |
| 1.6 BSP测序 | 第20-23页 |
| 1.7 Quantitative RT-PCR检测胶质瘤标本中ATF5的表达水平 | 第23-26页 |
| 2.结果 | 第26-41页 |
| 2.1 临床胶质瘤样本的收集及临床病理学资料分析 | 第26-30页 |
| 2.2 RT-PCR法检测IE2 mRNA在胶质瘤与急性脑外伤组织中的表达情况 | 第30-31页 |
| 2.3 CpG岛的预测及甲基化引物设计 | 第31-34页 |
| 2.4 BSP测序结果 | 第34-38页 |
| 2.5 ATF5 mRNA在胶质瘤及急性脑外伤组织中的表达情况 | 第38-39页 |
| 2.6 ATF5启动子区甲基化与胶质瘤患者临床病理特征的关系 | 第39-41页 |
| 3.讨论 | 第41-45页 |
| 第二章 HCMV感染对U87及原代胶质瘤细胞中ATF5甲基化及表达的影响 | 第45-76页 |
| 引言 | 第49-50页 |
| 1.材料和方法 | 第50-64页 |
| 1.1 主要实验仪器设备 | 第50页 |
| 1.2 主要实验试剂及配制 | 第50-53页 |
| 1.3 细胞培养 | 第53-54页 |
| 1.4 HCMV AD169株毒种的制备与定量 | 第54-55页 |
| 1.5 HCMV体外感染模型的建立及SAM处理 | 第55页 |
| 1.6 BSP测序 | 第55-59页 |
| 1.7 CCK-8 法检测胶质瘤细胞增殖情况 | 第59页 |
| 1.8 RT-PCR检测IE2、ATF5及甲基化相关基因mRNA的表达水平 | 第59-61页 |
| 1.9 Western Blot检测ATF5蛋白表达的变化 | 第61-64页 |
| 2.结果 | 第64-74页 |
| 2.1 原代人胚肺成纤维细胞的分离培养及HCMV毒种的制备 | 第64页 |
| 2.2 原代胶质瘤细胞的分离培养 | 第64-65页 |
| 2.3 SAM浓度的选择 | 第65-66页 |
| 2.4 HCMV体外感染细胞模型的建立 | 第66-67页 |
| 2.5 BSP测序结果 | 第67-68页 |
| 2.6 RT-PCR法检测IE2、ATF5基因的表达及与甲基化水平相关性分析 | 第68-69页 |
| 2.7 Western Blot检测ATF5蛋白表达水平的变化 | 第69-70页 |
| 2.8 CCK-8 检测胶质瘤细胞增殖情况 | 第70-71页 |
| 2.9 甲基化相关基因（TET1, DNMT1, DNMT3A, DNMT3B）的表达变化 | 第71-74页 |
| 3.讨论 | 第74-76页 |
| 结论 | 第76-77页 |
| 参考文献 | 第77-80页 |
| 综述 | 第80-92页 |
| 参考文献 | 第88-92页 |
| 攻读博士期间发表的论文 | 第92-93页 |
| 致谢 | 第93-94页 |
