| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 缩略词表 | 第17-19页 |
| 1 引言 | 第19-47页 |
| 1.1 绵羊肺腺瘤概述 | 第19-28页 |
| 1.1.1 绵羊肺腺瘤病的临床症状、病理学特征以及流行病学概括 | 第19-23页 |
| 1.1.2 绵羊肺腺瘤病的致瘤机制 | 第23-28页 |
| 1.2 EGFR简介 | 第28-32页 |
| 1.2.1 EGFR信号通路 | 第28-29页 |
| 1.2.3 EGFR与JSRV的关系 | 第29-32页 |
| 1.3 MAPK信号通路简介 | 第32-36页 |
| 1.3.1 Ras-Raf-ERK信号通路 | 第33页 |
| 1.3.2 p38 MAPK信号通路 | 第33-34页 |
| 1.3.3 JNK信号通路 | 第34-35页 |
| 1.3.4 MAPK信号通路与JSRV的关系 | 第35-36页 |
| 1.4 PI3K/Akt/mTOR信号通路简介 | 第36-41页 |
| 1.4.1 Akt信号通路 | 第37-38页 |
| 1.4.2 mTOR信号通路 | 第38-39页 |
| 1.4.3 Akt/mTOR信号通路与JSRV的关系 | 第39-41页 |
| 1.5 细胞自噬简介 | 第41-44页 |
| 1.5.1 PI3K/Akt/mTOR信号通路调控自噬 | 第42-43页 |
| 1.5.2 MAPK信号通路调控自噬 | 第43页 |
| 1.5.3 自噬与JSRV的关系 | 第43-44页 |
| 1.6 研究目的及意义 | 第44-45页 |
| 1.7 技术路线 | 第45-47页 |
| 2 试验一 自然感染OPA病肺的组织病理学观察与免疫组织化学检测 | 第47-53页 |
| 2.1 材料与方法 | 第47-49页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第47页 |
| 2.1.2 仪器设备 | 第47页 |
| 2.1.3 试验试剂 | 第47-48页 |
| 2.1.4 试验方法 | 第48-49页 |
| 2.2 试验结果 | 第49-51页 |
| 2.2.1 OPA病肺的组织病理学观察结果 | 第49-50页 |
| 2.2.2 OPA病肺组织中JSRV Env的表达定位结果 | 第50-51页 |
| 2.3 讨论 | 第51-52页 |
| 2.4 小结 | 第52-53页 |
| 3 试验二 EGFR在自然感染OPA病肺组织中表达的检测 | 第53-59页 |
| 3.1 材料与方法 | 第53-55页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第53页 |
| 3.1.2 仪器设备 | 第53页 |
| 3.1.3 试验试剂 | 第53-54页 |
| 3.1.4 试验方法 | 第54-55页 |
| 3.2 试验结果 | 第55-59页 |
| 3.2.1 OPA病肺组织中EGFR的表达定位结果 | 第55-56页 |
| 3.2.2 OPA病肺组织中EGFR的蛋白表达检测结果 | 第56-57页 |
| 3.2.3 讨论 | 第57-58页 |
| 3.2.4 小结 | 第58-59页 |
| 4 试验三 MAPK和Akt/mTOR通路在自然感染OPA病肺组织中表达的检测 | 第59-67页 |
| 4.1 材料与方法 | 第59-61页 |
| 4.1.1 试验材料 | 第59页 |
| 4.1.2 仪器设备 | 第59页 |
| 4.1.3 试验试剂 | 第59-61页 |
| 4.1.4 试验方法 | 第61页 |
| 4.2 试验结果 | 第61-67页 |
| 4.2.1 OPA病肺组织中MAPK通路的表达定位结果 | 第61-62页 |
| 4.2.2 OPA病肺组织中MAPK通路的磷酸化水平检测结果 | 第62-63页 |
| 4.2.3 OPA病肺组织中Akt/mTOR通路的表达定位结果 | 第63-64页 |
| 4.2.4 OPA病肺组织中Akt/mTOR通路的磷酸化水平检测结果 | 第64-65页 |
| 4.2.5 讨论 | 第65-66页 |
| 4.2.6 小结 | 第66-67页 |
| 5 试验四 Beclin-1和LC31Ⅱ/Ⅰ在自然感染OPA病肺组织中表达的检测 | 第67-76页 |
| 5.1 材料与方法 | 第67-71页 |
| 5.1.1 试验材料 | 第67页 |
| 5.1.2 仪器设备 | 第67页 |
| 5.1.3 试验试剂 | 第67-69页 |
| 5.1.4 试验方法 | 第69-71页 |
| 5.2 试验结果 | 第71-76页 |
| 5.2.1 OPA病肺组织中Beclin-1和LC3基因表达检测结果 | 第71-72页 |
| 5.2.2 OPA病肺组织中Beclin-1和LC3表达定位结果 | 第72-73页 |
| 5.2.3 OPA病肺组织中Beclin-1和LC3蛋白表达检测结果 | 第73-74页 |
| 5.2.4 讨论 | 第74-75页 |
| 5.2.5 小结 | 第75-76页 |
| 6 试验五 EGFR在JSRV Env诱导转化的细胞系中表达的检测 | 第76-88页 |
| 6.1 材料与方法 | 第76-80页 |
| 6.1.1 试验材料 | 第76页 |
| 6.1.2 仪器设备 | 第76页 |
| 6.1.3 试验试剂 | 第76-78页 |
| 6.1.4 试验方法 | 第78-80页 |
| 6.2 试验结果 | 第80-88页 |
| 6.2.1 重组表达质粒最佳转染效率的测定结果 | 第80-81页 |
| 6.2.2 NIH3T3细胞中env基因表达检测结果 | 第81页 |
| 6.2.3 NIH3T3细胞中Env蛋白表达检测结果 | 第81-82页 |
| 6.2.4 NIH3T3细胞中EGFR的蛋白表达检测结果 | 第82-83页 |
| 6.2.5 绒毛膜滋养层细胞中env基因表达检测结果 | 第83-84页 |
| 6.2.6 绒毛膜滋养层细胞中Env蛋白表达检测结果 | 第84-85页 |
| 6.2.7 绒毛膜滋养层细胞中EGFR的蛋白表达检测结果 | 第85-86页 |
| 6.2.8 讨论 | 第86-87页 |
| 6.2.9 小结 | 第87-88页 |
| 7 试验六 MAPK和Akt/mTOR通路在JSRV Env诱导转化的细胞系中的表达 | 第88-98页 |
| 7.1 材料与方法 | 第88-91页 |
| 7.1.1 试验材料 | 第88页 |
| 7.1.2 仪器设备 | 第88页 |
| 7.1.3 试验试剂 | 第88-90页 |
| 7.1.4 试验方法 | 第90-91页 |
| 7.2 试验结果 | 第91-98页 |
| 7.2.1 NIH3T3细胞中MAPK通路的检测结果 | 第91-92页 |
| 7.2.2 NIH3T3细胞中Akt/mTOR通路的检测结果 | 第92-93页 |
| 7.2.3 滋养层细胞中MAPK通路的检测结果 | 第93-95页 |
| 7.2.4 滋养层细胞中Akt/mTOR通路的检测结果 | 第95-96页 |
| 7.2.5 讨论 | 第96-97页 |
| 7.2.6 小结 | 第97-98页 |
| 8 试验七 Beclin-1和LC3Ⅱ/Ⅰ在JSRV-Env诱导转化的细胞系中表达的检测 | 第98-105页 |
| 8.1 材料与方法 | 第98-100页 |
| 8.1.1 试验材料 | 第98页 |
| 8.1.2 仪器设备 | 第98页 |
| 8.1.3 试验试剂 | 第98-100页 |
| 8.1.4 试验方法 | 第100页 |
| 8.2 试验结果 | 第100-105页 |
| 8.2.1 NIH3T3细胞中Beclin-1和LC3Ⅱ/Ⅰ的表达检测结果 | 第100-101页 |
| 8.2.2 滋养层细胞中Beclin-1和LC3Ⅱ/Ⅰ的表达检测结果 | 第101-103页 |
| 8.2.3 讨论 | 第103-104页 |
| 8.2.4 小结 | 第104-105页 |
| 9 试验八 MAPK和Akt/mTOR通路调控Beclin-1和LC3Ⅱ/Ⅰ的表达机制 | 第105-123页 |
| 9.1 材料与方法 | 第105-109页 |
| 9.1.1 试验材料 | 第105页 |
| 9.1.2 仪器设备 | 第105页 |
| 9.1.3 试验试剂 | 第105-107页 |
| 9.1.4 试验方法 | 第107-109页 |
| 9.2 试验结果 | 第109-123页 |
| 9.2.1 抑制剂条件摸索结果 | 第109-111页 |
| 9.2.2 NIH3T3细胞中Beclin-1和LC3的基因表达检测结果 | 第111-113页 |
| 9.2.3 NIH3T3细胞中Beclin-1和LC3Ⅱ/Ⅰ的蛋白表达检测结果 | 第113-115页 |
| 9.2.4 绒毛膜滋养层细胞中Beclin-1和LC3Ⅱ/Ⅰ的基因表达检测结果 | 第115-118页 |
| 9.2.5 绒毛膜滋养层细胞中Beclin-1和LC3Ⅱ/Ⅰ的蛋白表达检测结果 | 第118-120页 |
| 9.2.6 讨论 | 第120-122页 |
| 9.2.7 小结 | 第122-123页 |
| 10 结论 | 第123-124页 |
| 致谢 | 第124-125页 |
| 参考文献 | 第125-147页 |
| 作者简介 | 第147页 |
