| 中文摘要 | 第10-13页 |
| ABSTRACT | 第13-14页 |
| 符号说明 | 第15-18页 |
| 前言 | 第18-25页 |
| 1. 老年黄斑变性的现状 | 第18页 |
| 2. 脉络膜血管新生 | 第18-23页 |
| 2.1 视网膜脉络膜复合结构 | 第19-20页 |
| 2.2 VEGF与CNV和AMD | 第20-21页 |
| 2.3 缺氧、活性氧与CNV | 第21-23页 |
| 2.4 对于脉络膜血管新生当下治疗 | 第23页 |
| 3. 海藻糖衍生物 | 第23-25页 |
| 实验材料与方法 | 第25-34页 |
| 1. 实验材料 | 第25-27页 |
| 1.1 化合物 | 第25页 |
| 1.2 细胞株 | 第25页 |
| 1.3 试剂 | 第25-26页 |
| 1.4 动物实验 | 第26页 |
| 1.5 仪器设备 | 第26-27页 |
| 2. 实验方法 | 第27-34页 |
| 2.1 细胞培养 | 第27页 |
| 2.2 MTT法检测化合物DMBT对视网膜色素上皮ARPE-19细胞以及脉络膜内皮RF/6A细胞增殖的影响 | 第27-28页 |
| 2.3 缺氧微环境中DMBT对RF/6A细胞以及条件培养基下的RF/6A细胞管形成能力的影响 | 第28-29页 |
| 2.4 ELISA实验检测缺氧微环境中DMBT对ARPE-19细胞分泌到细胞外的VEGF因子的影响 | 第29-31页 |
| 2.5 缺氧微环境中DMBT对ARPE-19细胞内活性氧的影响 | 第31页 |
| 2.6 Western blotting检测缺氧微环境中DMBT对ARPE-19细胞内相关因子表达的影响 | 第31-32页 |
| 2.7 C57小鼠激光脉络膜损伤模型的建立和药物的注射 | 第32页 |
| 2.8 脉络膜铺片染色 | 第32-33页 |
| 2.9 Western blotting检测DMBT对小鼠视网膜内相关因子的分泌 | 第33页 |
| 2.10 统计学方法 | 第33-34页 |
| 实验结果 | 第34-43页 |
| 1.1 DMBT对ARPE-19细胞和RF/6A细胞增殖的影响 | 第34页 |
| 1.2 缺氧状态下DMBT和ARPE-19细胞条件培养基对RF/6A细胞迁移和管形成作用的影响 | 第34-37页 |
| 1.3 玻璃体内注射DMBT对激光损伤小鼠脉络膜血管新生模型血管新生面积的影响 | 第37-38页 |
| 1.4 缺氧状态下DMBT对ARPE-19细胞分泌到细胞外的血管内皮生长因子VEGF的影响 | 第38-39页 |
| 1.5 玻璃体内注射DMBT对激光损伤小鼠脉络膜血管新生模型视网膜中血管生长因子VEGF的影响 | 第39页 |
| 1.6 缺氧条件下检测DMBT对ARPE-19细胞分泌的VEGF与细胞内活性氧之间的关系 | 第39-41页 |
| 1.7 Western blotting检测缺氧状态下DMBT对于ARPE-19细胞相关蛋白表达的影响 | 第41-42页 |
| 1.8 Western blotting检测缺氧状态下DMBT对于ARPE-19细胞p-Akt和p-NF-κB表达的影响 | 第42-43页 |
| 讨论 | 第43-47页 |
| 结论 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
| 攻读硕士期间发表的论文 | 第56-57页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第57页 |
