| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 缩略词表(Abbrevation) | 第12-13页 |
| 第一章 绪论 | 第13-35页 |
| 1.1 纤维素的生物降解策略 | 第13-17页 |
| 1.1.1 游离纤维素酶协同降解 | 第14-15页 |
| 1.1.2 纤维小体酶系 | 第15-16页 |
| 1.1.3 细胞结合型纤维素降解体系 | 第16-17页 |
| 1.2 细菌的膜转运蛋白 | 第17-27页 |
| 1.2.1 外膜转运蛋白 | 第17-25页 |
| 1.2.2 内膜转运蛋白 | 第25-27页 |
| 1.3 细菌中甲硫氨酸的来源 | 第27-31页 |
| 1.3.1 甲硫氨酸的生物合成 | 第27-31页 |
| 1.3.2 甲硫氨酸的转运 | 第31页 |
| 1.4 C. hutchinsonii的研究进展 | 第31-32页 |
| 1.5 论文的立题依据和研究内容 | 第32-35页 |
| 第二章 chu_0089 (TonB-dependent-receptor)的插入失活菌株的构建及性质研究 | 第35-61页 |
| 2.1 材料方法 | 第35-44页 |
| 2.1.1 菌种质粒 | 第35-36页 |
| 2.1.2 引物 | 第36-37页 |
| 2.1.3 生物信息学分析网站 | 第37页 |
| 2.1.4 试剂仪器 | 第37页 |
| 2.1.5 培养条件 | 第37-38页 |
| 2.1.6 常规分子生物学方法 | 第38页 |
| 2.1.7 电转化 | 第38-39页 |
| 2.1.8 生长测定 | 第39页 |
| 2.1.9 逆转录-PCR | 第39-41页 |
| 2.1.10 全菌体的纤维素吸附 | 第41-42页 |
| 2.1.11 外膜蛋白对纤维素的吸附 | 第42-43页 |
| 2.1.12 全菌体纤维素酶活的测定 | 第43页 |
| 2.1.13 菌体的葡萄糖吸收 | 第43-44页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第44-59页 |
| 2.2.1 CHU_0089的序列分析 | 第44-45页 |
| 2.2.2 chu_0089的基因座位分析 | 第45页 |
| 2.2.3 chu_0089单插入失活菌株构建 | 第45-47页 |
| 2.2.4 0089in在不同碳源下的生长测定 | 第47-48页 |
| 2.2.5 0089in菌株的chu_0090转录情况的分析 | 第48-49页 |
| 2.2.6 回补菌株构建 | 第49-51页 |
| 2.2.7 纤维素吸附实验 | 第51-52页 |
| 2.2.8 0089in纤维素酶活检测 | 第52-53页 |
| 2.2.9 0089in的葡萄糖吸收 | 第53-54页 |
| 2.2.10 0089in在基础盐(Stanier)培养基中的生长测定 | 第54-57页 |
| 2.2.11 0089in的外膜蛋白的提取 | 第57-58页 |
| 2.2.12 0089in发酵液的pH变化 | 第58-59页 |
| 2.3 本章小结 | 第59-61页 |
| 第三章 C. hutchinsonii转座诱变突变株的筛选、chu_0694和chu_1812插入失活突变株构建及性质研究 | 第61-75页 |
| 3.1 材料方法 | 第61-65页 |
| 3.1.1 菌种质粒 | 第61-62页 |
| 3.1.2 引物 | 第62页 |
| 3.1.3 生物信息学分析网站 | 第62-63页 |
| 3.1.4 试剂仪器 | 第63页 |
| 3.1.5 培养条件 | 第63页 |
| 3.1.6 常规分子生物学方法 | 第63页 |
| 3.1.7 电转化 | 第63页 |
| 3.1.8 转座突变株的筛选与插入位点的确定 | 第63-64页 |
| 3.1.9 Southern blot验证 | 第64页 |
| 3.1.10 生长测定 | 第64页 |
| 3.1.11 菌体边缘扩散 | 第64-65页 |
| 3.1.12 单菌体运动观察 | 第65页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第65-73页 |
| 3.2.1 转座突变株插入位点的鉴定 | 第65-66页 |
| 3.2.2 关于T964插入位点的Southern blot验证 | 第66页 |
| 3.2.3 chu_0694与chu_1812单插入失活菌株的构建 | 第66-68页 |
| 3.2.4 转座突变株及单插入失活菌株的滤纸生长实验 | 第68-69页 |
| 3.2.5 转座突变株的菌落边缘扩散及运动观察 | 第69-70页 |
| 3.2.6 chu_0694与chu_1812的功能分析 | 第70-71页 |
| 3.2.7 转座突变株在不同氮源及碳源培养基中的生长测定 | 第71-72页 |
| 3.2.8 单插入失活菌株在添加甲硫氨酸的滤纸平板上的生长测定 | 第72-73页 |
| 3.3 本章小结 | 第73-75页 |
| 第四章 C. hutchinsonii中高效表达启动子序列的筛选 | 第75-93页 |
| 4.1 材料方法 | 第75-82页 |
| 4.1.1 菌种质粒 | 第75-76页 |
| 4.1.2 引物 | 第76-79页 |
| 4.1.3 生物信息学分析网站 | 第79-80页 |
| 4.1.4 试剂仪器 | 第80页 |
| 4.1.5 培养条件 | 第80页 |
| 4.1.6 常规分子生物学方法 | 第80页 |
| 4.1.7 电转化 | 第80页 |
| 4.1.8 逆转录PCR | 第80页 |
| 4.1.9 荧光显微镜的观察 | 第80-81页 |
| 4.1.10 荧光强度定量分析 | 第81页 |
| 4.1.11 ONPG酶活的测定 | 第81-82页 |
| 4.2 结果与讨论 | 第82-91页 |
| 4.2.1 以GFP为报告基因检测启动子启动表达能力 | 第82-84页 |
| 4.2.2 以LacZ及CAT为报告基因检测启动子启动表达能力 | 第84-88页 |
| 4.2.3 GFP与基因融合表达菌株的荧光检测 | 第88-90页 |
| 4.2.4 GFP表达菌株关于GFP的转录分析 | 第90-91页 |
| 4.3 本章小结 | 第91-93页 |
| 全文总结 | 第93-95页 |
| 参考文献 | 第95-100页 |
| 致谢 | 第100-101页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第101页 |
